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shenxing325

铜虫 (小有名气)

[求助] 求助,Western-Blot转膜不成功

各位虫友,做了两次Western-Blot转膜都不成功,想各位帮我指点一下可能的原因,这些是我做实验的时候的条件细节:
        目的蛋白大小100kD左右,用的是湿转法,电转缓冲液(5×)的配方是:
        Glycine   15.1g
        Tris         72g
        SDS        5g
        定容至一升,使用前取200mL,再加700mL水和100mL甲醇,4度备用
        滤纸(3mm滤纸用两边各用两层)比膜和胶大比较多,之前看过一些人说滤纸要比膜小,但是好像大多数人都说对于湿转来说没有关系。
        膜用的是0.45um的PVDF膜,这个有人说要用0.22um的,是这样吗?
        电转于4度冰柜中进行,80V电压,时间2h,用立春红染色,但是什么都没有,我没有用预染Marker。
       看大多数人都说湿转是非常容易成功的,我的实验操作哪里有问题吗?请指教,谢谢!
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qiyaocheng

木虫 (小有名气)

老虫

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
wanhscn(金币+2): 鼓励交流! 2012-01-15 16:07:54
amisking: 金币+10, 鼓励积极发帖帮助解答问题。 2012-10-17 20:45:31
有些经验性的东西看看对你能否有用处
1.        SDS-PAGE,首先看你的电泳有没有跑好,将两块胶同样上样电泳,最好是在一个电泳槽里面电泳。伯乐的mini槽蛮好的,又快功能又多,我们一直用。一块用于考马斯亮蓝染色,另一块用于转膜,切记。一定要能在你的对照胶上找到你的蛋白质。
2.        切胶做三明治。PVDF膜在纯甲醇中活化30s(用镊子按到甲醇里),取出放入转移缓存液中备用。切胶尽量大小合适一点,别拿整块胶上去搞,膜与胶大小一致,滤纸小一点即可,千万不能大了,大了绝对是会短路的(因为你是要把它压紧的,湿滤纸接触后电阻小,直接绕过胶了)。整个切胶过程要湿润,切好了胶立即放入转移缓存液中,所有过程戴手套进行,镊子夹取时不能夹到中间。
三明治顺序:负极-滤纸(2-3层)-胶-PVDF膜-滤纸-正极,每一层都要赶走气泡,气泡很容易发现,用玻璃棒擀,一定不要用枪头戳(很容易戳坏滤纸,尤其是胶)
夹紧过程要果断迅速,不然会错位。
3.        转膜。首先,转膜缓冲液要充足,配方要准确,其中涉及到SDS和甲醇的比例,这两者是消长关系。一般认为,如果是小分子量的蛋白比如十几KD,甲醇比例要高(我加了30%的甲醇就彻底没有加SDS),大分子量的则SDS要高,甲醇要低(这是某公司技术总监说的经验)。
其次,是转膜的缓冲液要冷,大家都知道要预冷,可是整个过程产热很严重的,条件差一点的也要放4度冰箱,一般用“冰水浴”(冰水浴传热效果好),伯乐的mini槽都配有冰盒,建议拆掉一包生物冰袋,把胶状物倒到冰盒里面冻成冰,尤其要注意不能倒太多,容易把冰盒撑变形,最多70%即可(一般冰块很容易就化光了,生物冰袋持久一些)。
最后,转膜条件。一定要找到最佳的转膜条件,这个能借鉴的很多,根据实际情况自己摸索一下,电压和时间,注意要转完全啊,最好是能带着预染Marker一起,这就方便多了。有个流程上说小于120KD的蛋白250mAmp for 4 hours or 500mAmp for 2 hours,参考一下。
4.        清洗平衡,将PVDF膜放入1X TBST中浸泡5分钟。摇床摇动。这一步很重要,从含有甲醇的有机相中转入水相中的过渡。
5.        封闭,将膜面(载有蛋白的一面)朝上,放入封闭液中,4度过夜封闭。
至此,前半段基本完成,这时就已经很晚了,兄弟,可以回去睡觉了
毕业回望科研路,满目疮痍一身土
10楼2012-01-15 13:33:12
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西瓜

荣誉版主 (知名作家)

也有可能是转过头……
2楼2012-01-12 21:14:25
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山东老杜

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
电压低点

怎么不加个预染marker
3楼2012-01-12 22:34:14
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dnaxxx

至尊木虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
我用的是NC膜,一般喜欢用300mA横流转1个小时或者90分钟(大分子),从来没有出过问题。
没用过PVDF膜,所以不知道你的电压条件什么的是不是合适,不过PVDF膜需要先用甲醇活化正电基团,不知道你活化了没有。
4楼2012-01-13 07:25:42
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