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qzhaiyan

木虫 (著名写手)

小胖子

[交流] 【求助/交流】Ni柱洗脱蛋白

我的蛋白以前都是用10和20mM咪唑洗杂蛋白,然后用250mM咪唑洗脱目的蛋白,效果很好。最近不知道为什么我的蛋白在10和20mM咪唑下就洗脱下来了,很奇怪。哪位高手指点一下!
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liouwzh

木虫 (正式写手)

qzhaiyan(金币+1): 2010-08-12 08:19:19
是不是其他盐离子浓度变了,盐离子浓度的改变对洗脱也是有影响的。
2楼2010-08-11 16:24:26
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jasco

木虫 (正式写手)

qzhaiyan(金币+1): 2010-08-12 08:19:29
也可能柱子结合力不够了,镍柱再生一下
3楼2010-08-11 16:37:40
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月月大可

木虫 (著名写手)

★ ★
reasonspare(金币+2):谢谢分享。 2010-08-12 06:00:11
qzhaiyan(金币+1): 2010-08-12 08:19:09
可能是柱子使用的久了,结合力变弱了。

使用0.2M EDTA   0.5M NaCl  洗脱掉Ni,大量水清洗干净后再次挂Ni。

也可以在洗掉Ni之后使用6M盐酸胍充分清洗,效果更加。
4楼2010-08-11 23:44:48
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雪山飞狐7233

铁杆木虫 (著名写手)

铁杆小虫

学习一下!
梦在路就在!
5楼2010-08-12 09:12:17
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xuguanghai

木虫 (职业作家)

qzhaiyan(金币+1): 2010-08-27 09:04:33
一个可能是你的蛋白出问题了,还有一个就是检查你的BUFFER的pH对不对,最后看看你的NI-柱是不是使用多次,微球变型造成微球破损之类的
6楼2010-08-12 09:18:54
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sqhnsd

金虫 (正式写手)

qzhaiyan(金币+1): 2010-08-12 11:01:33
有些蛋白确实会存在这样的情况,在低浓度的咪唑下就会被洗脱下来,跟柱料还有你的蛋白都有关系。你可以这样做,用不含咪唑的binding buffer一直冲洗,知道非特异性结合的蛋白都被清洗干净,然后10 mM接0.5ml,20 mM接1ml,50 mM接1ml,直接250mM接上3-5管,然后都去跑SDS-PAGE去检测那一管比较纯。在低浓度咪唑条件下,杂蛋白还有你的目的蛋白都会被洗脱下来,因此,洗脱的体积要少,不能太多,否则你的蛋白都损失了,这部的目的为了去除杂蛋白。高浓度下收集你的样品,都搜集,然后看看那一管比较纯。
另外提醒:你这个蛋白是不是沉淀里面表达?如果是,你在洗脱的时候是不是没有加urea or sarkosyl?如果没有加,目的蛋白重新沉淀,直接从柱子上掉下来。
7楼2010-08-12 09:29:28
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