在制感受态的操作中见到了TB缓冲液 这个东东是可以单独购买吗?价格多少? 在网上看到了配方,那个 PIPES 要怎么买啊? 返回小木虫查看更多
可以买sigma的,因为质量放心,也可以买所谓的国产分装,看你的运气了。
tb就是Tris 缓冲液 找下就行 PIPES直接联系卖试剂的都能买,不过找质量好的买就行
每人回复啦
参考: http://www.zjubiolab.zju.edu.cn/NewsContent.aspx?ID=218 制备高效率感受态的方法 液氮或低温冰箱中取出的大肠杆菌 E.coli DH5, JM109,HB101等,在LB平板上划线,37度过夜至长出单菌落.挑直径1-3mm 的单菌落*可多个, 接种到250ml/3L锥形瓶或80ml/1L 锥形瓶的SOB培养基. 培养基量不可再多,会影响效率.在18度 150-250RPM 培养19-50h *没有冷却摇床的可在室温, 但不可高于37度.OD600约0.4-0.8时停止培养, 放在冰水中冷却10min 4度, 300RPM离心15min, 回收菌体去掉上清后, 用1/3体积的冰冷TB溶液悬浮, 在冷10min再次离心回收菌体用1/12.5体积的TB悬浮, 添加最终浓度为7%的DMSO, 再冷却10分钟0.1-1ml 分装, 直接在液氮中冻上.在液氮或-80度保存. TB溶液*TRANSFORMATION BUFFER: PIPES 3.0G 10mM CaCl2.2H2O 2.2g 15mM KCl 18.6g 250mM add water up to 950ml 用 5N KOH 调PH至6.7-6.8*低PH不溶 再加终浓度为55mM的MnCl2.4H2O 10.9g 定溶到1升, 过滤灭菌, 4度保存. 但有人提出, 冻存后转化效率降低, 且这种方法不适合大质粒. 【zihudie】 (1)将置于液氮保存的大肠杆菌划线在LB平板上,37℃培养活化。 (2)挑取经活化的大肠杆菌单菌落于SOC液体培养基,18℃,200-250rpm培养。 (3)当OD600=0.5-0.8时,用预冷的40mL离心管于4℃,8000rpm离心10min,收集菌体。 (4)用预冷的TB Buffer重悬菌体,4℃,8000rpm离心10min,收集菌体。 (5)重复第4步操作。 (6)用8mL预冷的TB Buffer重悬菌体,缓慢加入DMSO至终浓度7% 。 (7)冰浴10min后,分装保存于液氮中。 本法效率极高,建议大家采纳 【yog】 1. 单菌落-------2ml LB 37度 120RPM过夜------1%转接-------37度 200RPM2小时(OD到0.4~0.5) 2. 2ml, 冰浴15min, 4度, 6000RPM 5min, 弃上清, 悬浮于1ml 0.1MCaCl2中, 冰浴20min 3. 4度, 6000RPM 10min, 重悬浮于200ul 0.1MCaCl2中, 冰浴30min 建议用TSS法,简单方便,比氯化钙法的转化效率高.别的菌可能不一定适用。 以下为转贴,具体方法请最好查阅文献。 E.coli感受态细胞制备方法: 单菌落平板至2ml LB, 37 oC 250 r/m ovn, 1ml 转至50 ml LB, 37oC 250 r/m至 A600=0.2-0.4 离心后用10ml TSS重悬后,分装 -70度保存。尽量冰上操作. 转化: 加质粒(<5 ul/100ul cell) 后冰上30分钟,42度 90秒,冰上2min,加LB至1ml , 37度 1小时后铺抗生素平板。 TSS: 7.0ml pH6.1 LB 2.0ml 50% PEG6000 0.5ML dmso 0.2ML Mg2+ (0.1ml 1mol/l MgCl2 and 0.1ml 1mol/l MgSO4) 0.3ml ddH2O [ Last edited by 香菱儿 on 2008-9-14 at 08:36 ],
可以买sigma的,因为质量放心,也可以买所谓的国产分装,看你的运气了。
tb就是Tris 缓冲液
找下就行
PIPES直接联系卖试剂的都能买,不过找质量好的买就行
做感受态用的TB缓冲液不是Tris的
每人回复啦
参考: http://www.zjubiolab.zju.edu.cn/NewsContent.aspx?ID=218
制备高效率感受态的方法
液氮或低温冰箱中取出的大肠杆菌 E.coli DH5, JM109,HB101等,在LB平板上划线,37度过夜至长出单菌落.挑直径1-3mm 的单菌落*可多个, 接种到250ml/3L锥形瓶或80ml/1L 锥形瓶的SOB培养基. 培养基量不可再多,会影响效率.在18度 150-250RPM 培养19-50h *没有冷却摇床的可在室温, 但不可高于37度.OD600约0.4-0.8时停止培养, 放在冰水中冷却10min 4度, 300RPM离心15min, 回收菌体去掉上清后, 用1/3体积的冰冷TB溶液悬浮, 在冷10min再次离心回收菌体用1/12.5体积的TB悬浮, 添加最终浓度为7%的DMSO, 再冷却10分钟0.1-1ml 分装, 直接在液氮中冻上.在液氮或-80度保存.
TB溶液*TRANSFORMATION BUFFER:
PIPES 3.0G 10mM
CaCl2.2H2O 2.2g 15mM
KCl 18.6g 250mM
add water up to 950ml
用 5N KOH 调PH至6.7-6.8*低PH不溶
再加终浓度为55mM的MnCl2.4H2O 10.9g
定溶到1升, 过滤灭菌, 4度保存.
但有人提出, 冻存后转化效率降低, 且这种方法不适合大质粒.
【zihudie】
(1)将置于液氮保存的大肠杆菌划线在LB平板上,37℃培养活化。
(2)挑取经活化的大肠杆菌单菌落于SOC液体培养基,18℃,200-250rpm培养。
(3)当OD600=0.5-0.8时,用预冷的40mL离心管于4℃,8000rpm离心10min,收集菌体。
(4)用预冷的TB Buffer重悬菌体,4℃,8000rpm离心10min,收集菌体。
(5)重复第4步操作。
(6)用8mL预冷的TB Buffer重悬菌体,缓慢加入DMSO至终浓度7% 。
(7)冰浴10min后,分装保存于液氮中。
本法效率极高,建议大家采纳
【yog】
1. 单菌落-------2ml LB 37度 120RPM过夜------1%转接-------37度 200RPM2小时(OD到0.4~0.5)
2. 2ml, 冰浴15min, 4度, 6000RPM 5min, 弃上清, 悬浮于1ml 0.1MCaCl2中, 冰浴20min
3. 4度, 6000RPM 10min, 重悬浮于200ul 0.1MCaCl2中, 冰浴30min
建议用TSS法,简单方便,比氯化钙法的转化效率高.别的菌可能不一定适用。
以下为转贴,具体方法请最好查阅文献。
E.coli感受态细胞制备方法:
单菌落平板至2ml LB, 37 oC 250 r/m ovn, 1ml 转至50 ml LB, 37oC 250 r/m至 A600=0.2-0.4
离心后用10ml TSS重悬后,分装 -70度保存。尽量冰上操作.
转化: 加质粒(<5 ul/100ul cell) 后冰上30分钟,42度 90秒,冰上2min,加LB至1ml
, 37度 1小时后铺抗生素平板。
TSS:
7.0ml pH6.1 LB
2.0ml 50% PEG6000
0.5ML dmso
0.2ML Mg2+ (0.1ml 1mol/l MgCl2 and 0.1ml 1mol/l MgSO4)
0.3ml ddH2O
[ Last edited by 香菱儿 on 2008-9-14 at 08:36 ],