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youngsun50

木虫 (正式写手)

[求助] 细菌膜蛋白提取后复溶?

各位虫友,我提取的是G-细菌膜蛋白,用的是超速离心的方法,具体如下:
1.        100ml过夜培养菌液,离心洗涤,后2ml生理盐水重悬;
2.        超声破碎后,5000g,20min去除未破壁细胞;
3.        100,000g,4度离心1h;
4.        沉淀用3ml含2%SLS的生理盐水重悬,室温放置30min后用枪头轻轻吹打使之溶解;100,000g,4度离心1h;
5.        重复步骤4一次;
6.        用200ul蒸馏水溶解沉淀。
结果加入蒸馏水后沉淀不能溶液,过夜也不行,加入了2%SDS后,50度复溶也不行。试了2%triton-100也不行。
请问,有遇到这种情况的吗,怎么解决啊?

谢谢了
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学会感恩,强大自我
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May的旅行箱

新虫 (初入文坛)

★ ★ ★ ★
zhangxingc: 金币+4, 鼓励新虫发帖,欢迎常到微生物版 2013-05-02 14:23:33
您好!您的问题现在解决了吗?
我目前也是在做G-的膜蛋白提取,也用的是超离的方法,加的SLS也是2%的孵育半小时,提取过后跑电泳,提取材料用的是-20℃的菌体时一直跑不出电泳条带,用新鲜菌液做的时候就有条带过,很费解啊…………由于现实原因我的实验材料只有-20℃冷冻保藏的菌体,无法新鲜培养,一直没有进展,求大师指点啊!
对了,我是用的tris-HCl(pH=7.5)溶解的蛋白。
2楼2013-05-02 09:07:52
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youngsun50

木虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by May的旅行箱 at 2013-05-02 09:07:52
您好!您的问题现在解决了吗?
我目前也是在做G-的膜蛋白提取,也用的是超离的方法,加的SLS也是2%的孵育半小时,提取过后跑电泳,提取材料用的是-20℃的菌体时一直跑不出电泳条带,用新鲜菌液做的时候就有条带过, ...

我的操作过程:
100ml过夜培养的细菌,经离心收集,并用Tris-Mg 缓冲液[10mM Tris-Cl (pH 7.3),5mM MgCl2]洗涤,后重悬于3ml Tris-Mg 缓冲液中。冰浴超声破碎菌体,6000g,10min离心收集上清液,弃去未破碎细菌,上清液4 ℃ 100,000g 离心lh,收集沉淀。用5ml含2%的十二烷基肌氨酸钠(SLS)的Tris-Mg 缓冲液重悬沉淀物,室温温育20-30min,100,000g 室温离心lh,收集沉淀,重复该步骤一次,最后得到的沉淀(即为外膜蛋白)用100~200ul TES缓冲液[10mM Tris-Cl (pH 7.3),5mM乙二胺四乙酸(EDTA), 2%十二烷基磺酸钠(SDS)]溶解。  
TES溶解蛋白效果好一些,但冻存复溶时还是有沉淀,但我觉得对定性没影响。对于你的冷冻菌体提取,我一般也收集完菌体,冻与-20或-70,第二天再进行下一步,没啥影响。不知冻的时间长了对外膜蛋白分离有啥影响?
学会感恩,强大自我
3楼2013-05-03 16:40:38
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May的旅行箱

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by youngsun50 at 2013-05-03 16:40:38
我的操作过程:
100ml过夜培养的细菌,经离心收集,并用Tris-Mg 缓冲液洗涤,后重悬于3ml Tris-Mg 缓冲液中。冰浴超声破碎菌体,6000g,10min离心收集上清液,弃去未破碎细菌,上清液4 ℃ 100,000g 离心lh,收集沉 ...

非常感谢啊!我试试看TES缓冲液溶解看,不过SDS不是变性剂么?加这个会使膜蛋白的溶解性增加么?为什么不是加2%的SLS?
我的菌体是从工厂那边拿过来的,放了有好几个月了,另外,你的电泳跑的效果怎么样呢?在上样前是怎么处理蛋白的?我用的是加入2*buffer后70℃温育10min后上样
我又有看到说是在制胶的时候加入4M的尿素会增加膜蛋白的溶解性,这个你有试过的么?
4楼2013-05-04 11:20:57
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youngsun50

木虫 (正式写手)

SDS使蛋白变性应该没事儿,你最后电泳时也一般用的变性电泳啊。SLS不行,它选择性溶解膜其他组分,最后OMP不是沉淀收集了吗? 我的效果还挺好,上样就加等体积2*buffer,100度5-10min。尿素我没特意加过

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
学会感恩,强大自我
5楼2013-05-04 11:58:16
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