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lxy19870124铁虫 (初入文坛)
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[求助]
wb，条带异常，拖尾，弥散。 已有2人参与
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我崩溃了，做了很多次都是这样子的，不知道什么原因，上图！！！ [img] 就这熊样  条带中空  背景很深，我是挑不深的上的  无语 |
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 蛋白质生物学实验经验 |
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凌波丽
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- 专业: 生物大分子结构与功能
- 管辖: 生物科学综合
【答案】应助回帖
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可能在电泳和免疫印迹两方面都有问题。 一、SDS PAGE电泳带弥散和拖尾的原因和改进措施(2013-10-7) 1.原因一：上样量过多，应该减少上样量。对策：加样体积根据样品浓度和凝胶厚度灵活掌握。一般上样体积为10-15μL（即2-10μg蛋白质）。如果样品很稀上样量可以达到100μL。 2.原因二：样品溶解不完全。 对策： （1）样品应该充分溶解：保持各种蛋白质样品和Marker在上样前能够充分溶解，上样前最好离心一下，实在溶解不掉的颗粒就去掉。 (2)可以根据分子量标准的蛋白质试剂盒的要求加入样品溶解液；如果是自行配置标准和未知样品，按照0.5-1.0mg/L样品溶解液。溶解后，将其转移至Eppendorf管，盖上盖子（可以在盖子处加上卡子）后在110度沸水中水浴加热3分钟（可以在薄泡沫塑料板上钻出几个与Eppendorf管直径形同的圆洞，Eppendorf管放下去直到盖子边缘约束不能再往下为止，把薄泡沫塑料板的暴露出Eppendorf管的管体大部分的那一面放入沸水浴锅中，薄泡沫塑料板自然飘在沸水表面，便于取用和加热，也可避免沸水溅起。可以一批对于多个Eppendorf管进行不同时间的沸水浴。不要把Eppendorf管扔进沸水浴锅中，盖子可能会被冲开），而后在室温下冷却待用。如果较长时间不用，则将样品放入零下20度冰箱中储存，需用时在取出后使用前在110度沸水中加热3分钟室温冷却后再上样，以去掉样品蛋白质中的亚稳态聚合体。 （3）改变样品缓冲溶液使得样品能够充分溶解，SDS 用量要充分。 “一”的问题应该是说主要的。可能有WB背景高的问题，但是不明显。 二、WB背景高的可能原因与解决方法（可能不是原因或者主要原因） 1.洗膜不充分，增加洗涤液的体积和洗涤次数；在洗涤液中加入Tween=20。 2.二抗浓度过高，引起了一些非专一性的抗原-抗体相互作用，适当降低二抗浓度，可以分梯度进行。 3.二抗的识别抗原免疫簇不唯一，这是因为二抗是多克隆抗体，使用单克隆抗体的二抗，此时二抗的识别抗原免疫簇是唯一的，其非专一性的抗原-抗体相互作用会大为减少。当然，有时，单克隆抗体也会有识别抗原免疫簇不唯一，如果两种蛋白质的抗原免疫簇的结构很相近的话。如果不知道是不是二抗的识别抗原免疫簇不唯一，可以不加一抗的情况下只加二抗实验，可以检测出是否为二抗的的抗原免疫簇的识别的原因，若是的话，可以先更换封闭试剂，若无效，则要同时更换二抗。 4.封闭不充分，增加封闭液的封闭时间，适当提高温度，更换封闭液。 5.曝光过度，缩短曝光时间。 6.检测过程中膜干燥，保持充分的反应液，避免膜干燥。 7．若无别的选择，可尝试选择5%的脱脂奶粉，同时加入Tween=20。 8.滴定一抗或二抗的效价，找到一个产生清晰的信号强度可以接受的较低的抗体浓度。 9.缩短一抗和二抗的孵育时间。 |
8楼2014-07-18 10:58:04
lxy19870124
铁虫 (初入文坛)
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2楼2011-11-17 15:26:53
lxy19870124
铁虫 (初入文坛)
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3楼2011-11-17 15:30:08
4楼2011-11-17 19:18:55
