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请教real time pcr问题,谢谢!
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各位大虾们,小弟想咨询一些荧光定量的问题,如下: 1. RNA提取后,必须要测浓度吗,要根据浓度来决定加入多少ul的rna吗? 2. 假如cDNA中还有DNA污染,该怎么办?能在cDNA中加入DNAseI除去DNA吗,这回切割cDNA吗? 3. 我的模板稀释了四个梯度(5,25,125,625)选用18s做内参,结果CT值很大,都在30以上,后来调整了预变性时间,从5min增加到10min,CT值降为24左右,但是这对于内参基因来讲,仍然很大。我的目的基因CT值都在32-33以上。请问这是怎么回事?我的RNA用盒子提的,效果不错。反转录用的promega的m-mlv,用ologodt15(50uM)做引物。 4. 我有个同学做逆境,相同稀释倍数时,干旱处理时内参18S的CT在10左右,但做盐胁迫时相同18S的CT值竟然都在25左右,后来测了一下模板浓度, 都在1000-1300ng左右,感觉差不多呀,听一个师姐说做不同的逆境,可能需要不同的引物,请问这是怎么回事呢? 小弟最近一直很迷茫,不敢轻易再上ABI7500去尝试了,因为材料有限,模板有限,不敢轻易得瑟模板。请各位大虾给予解答!谢谢! |
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chenguestc
木虫 (职业作家)
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9楼2012-12-25 08:09:50
西瓜
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【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★
dhd997(金币+5): 赶快续,EPI等着你 2011-07-07 07:45:11
billy8580(金币+1): 不错,分析的详细 2011-07-10 00:40:53
dhd997(金币+5): 赶快续,EPI等着你 2011-07-07 07:45:11
billy8580(金币+1): 不错,分析的详细 2011-07-10 00:40:53
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1.需要测浓度的,理由:(1)不同的样品,用的RNA量一样(cDNA量也一样),定量结果更可靠。虽然内参可以校正样品量的差异,但是起始RNA量一样的话,结果更可靠,也更漂亮(理想情况是各个不同样品内参的Ct值非常接近);(2)反转录酶能力不是无限的,说明书上都有说RNA的最大加入量,所以需要预先知道RNA浓度;(3)保证实验的可重复性。 2.DNA酶也会降解cDNA。不过可以用DNA酶处理RNA,之后灭活DNA酶(一般就是酚氯仿抽提),再做反转录。但是这样RNA的量损失很大,你样品少的话不推荐这样。当然通过引物设计,跨内含子,可以避免基因组DNA的扩增,不过引物有时候很难设计。最好的办法,还是好好提你的RNA,特别是加氯仿抽提之后取上清时,不要贪多,这样就能避免基因组DNA的污染了。再说了,你用试剂盒提的,如果还有基因组DNA污染,那就是操作不当啦。你样品宝贵,可以用其他材料,专门练练RNA提取。 (老婆逼睡觉,未完待续) |
2楼2011-07-07 02:13:23
西瓜
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【答案】应助回帖
amisking(EPI+1): 鼓励应助 2011-07-07 18:30:50
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3. Ct值跟预变性时间关系不大。你的情况是模板浓度太低了。连稀释5倍Ct值都那么大,那起始的RNA量太少了。下次测了RNA浓度,然后按照反转录试剂盒允许使用的RNA最大量来做反转录。之后梯度稀释(一般10倍一个梯度)再做荧光定量PCR。这个算是预实验,要解决的问题是模板该用多少ul。 4.如果内参随处理不同而变化的话,那不是个好内参啊。好的内参基因,不管如何处理,只要模板量一样,它的Ct值就应该差不多。不知道你师姐说的用不同引物是不是指用不同的内参基因,这方面还是问问你师姐吧。可以做内参的基因很多,actin、GAPDH、tublin等等,如果18s确实有这样的变化,建议你还是查查文献,换其他内参。 一家之言,仅供参考,欢迎各位同行指正哈 ![]() |
3楼2011-07-07 09:28:59
4楼2011-07-07 16:17:54













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