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定点突变出酶切之后出问题求助!!!急 求高手
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求助啊求助~~~~~~~~~~ 由于开始做实验,老师给我的这个任务是定点突变。实验的大概是这样的: 实验的引物是老师设计的。我们所用的引物基本都是他设计的。 实验目的是用定点突变的方法在目的基因里引入一个柔性片段。 实验采用的试剂盒是takara公司的KOD-Plus-Mutagenesis Kit试剂盒。 pcr的反应是 10XPCR Buffer 5μl plasimd 50ng 2mMdNTPs 5μl 10μM Primer F/R 1.5μl KOD-PlusDNApolymerase 1μl H2O up to 50μl 一般总的体系为50μl,但一般我们都减半做,就是25. pcr反应条件是: 94℃ 2min 98 ℃10sec 68 ℃1min/kb for 6 cycle 4℃ soaking 这些反应条件是试剂盒里所要求的。循环数是以前的师姐摸索出来的最佳循环数。 每次PCR结束后我都取2μl跑了电泳,实验组合对照组的有条带,且在对的位置上(4000多那个位置上)。但是他们的明亮度差不多。 每次都是到酶切的时候出问题。 用1μlDpnI在37度酶切一小时之后跑电泳。按理说酶切之后对照组都没有条带,而实验组的条带应该跟PCR是的差不多才对。 可是电泳条带却都是错的。酶切后的实验组和对照组都有条带,而且都在1000多的地方。 最开始以为是模板量太多了的缘故,但是这几天我把模板稀释了,加进去的量基本上都比标准用量(25ng)少一点。但是结果却还是跟以前一样,只是条带亮度暗些。 我这是出了什么问题啊????????????求指教啊。 |
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8楼2011-07-15 15:22:55













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