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饺子813

铜虫 (小有名气)

[求助] 求教血浆样品进HPLC前处理过程

用HPLC测血浆药物浓度,预计待测浓度在100ng——4000ng之间。
之前用的血浆处理方法是这样的:
取100ul血浆样品,加50ul内标,850ul甲醇————混匀1min——离心10min————取上清————过滤进样(每次进样20ul)。【我用的流动相是乙腈和水,标准样品是用甲醇配制的。】
结果出来高中低三个浓度的回收率呈递减趋势,相差很大,低浓度大概有50%~60%。然后看文献上的血样处理方式好像是有这样的:
取400ul血浆样品,加20ul内标,加5ml混合萃取剂————混匀、离心各10min——取上清氮气吹干——100ul流动相复溶进样。
我的问题是:
1、氮气吹干再复溶的目的是为了浓缩吗?这一步对提高回收率有什么作用吗?用上述文献中方法处理之后,是不是相当于将原来400ul里的药物浓缩到最后100ul中(理想中),就是浓度变成了4倍吗?
2、我取的血浆样品只有100ul,而且最后用100ul流动相复溶的话实在太少了,我用的进样瓶是1ml的,100ul刚盖过瓶底,针头吸不到样品。我想在原来用甲醇萃取一遍之后,再加一些甲醇混匀提取一次,这样会不会回收率能高些?
3、请教各位大神有没有更好、更简单的处理方法?我做的血样大概有400多个。。。。。。
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weantony

铜虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
建议你进样使用内插管,这样更小的复溶体积都可以,价格不贵的,几十块钱一包一两百个,塑料的;你的定量下限是多少阿

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6楼2013-04-01 14:44:58
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普通回帖

lmxc_sx

铁虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
氮气吹干的目的是为了去除有机相中的杂质,你复溶的时候还是可以加400ul,选取合适进样量就可以了,但是稀释倍数和定量下线一定要搞清楚。
2楼2013-04-01 11:21:56
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饺子813

铜虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by lmxc_sx at 2013-04-01 11:21:56
氮气吹干的目的是为了去除有机相中的杂质,你复溶的时候还是可以加400ul,选取合适进样量就可以了,但是稀释倍数和定量下线一定要搞清楚。

稀释倍数这个问题我还真是没搞明白。。。
假设我原先的血浆样品浓度是400ng/ml,取400ul样品,加50ul内标,加5ml萃取剂,混匀离心×××××,最后用400ul流动相复溶,那么最终样品被稀释了几倍(假定药物没有损失)?我觉得浓度不变啊......开始400,最后还是400.....这样理解对不对?
3楼2013-04-01 12:21:01
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xxaijwd

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
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饺子813: 金币+20, ★★★★★最佳答案, 非常感谢你的帮助! 2013-04-08 09:22:37
引用回帖:
3楼: Originally posted by 饺子813 at 2013-04-01 12:21:01
稀释倍数这个问题我还真是没搞明白。。。
假设我原先的血浆样品浓度是400ng/ml,取400ul样品,加50ul内标,加5ml萃取剂,混匀离心×××××,最后用400ul流动相复溶,那么最终样品被稀释了几倍(假定药物没有损失) ...

氮气吹干一方面是为了除去有机相(萃取时一般都是二氯甲烷、乙醚等有机相,一般不会直接把这些进柱子),另外,如果复溶体积和开始时血浆体积不同,也能起到浓缩的作用,比如400微升血浆,最后复溶到100微升,就是浓缩了4倍,更利于样品的检测,但是你用400微升复溶就没有浓缩倍数了。如果讲简单的样品前处理的话,对于常规方法没有什么好办法的,甲醇/乙腈沉淀蛋白样品处理时间已经很短了,但是样品相对液液萃取脏一些,对柱子不好。
4楼2013-04-01 12:29:31
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xxaijwd

木虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

此外,如果你的定量限不够的话,可以适当提高进样量,比如你进40微升,就相当于提高一倍了啊。

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5楼2013-04-01 12:30:46
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饺子813

铜虫 (小有名气)

送鲜花一朵
引用回帖:
5楼: Originally posted by xxaijwd at 2013-04-01 12:30:46
此外,如果你的定量限不够的话,可以适当提高进样量,比如你进40微升,就相当于提高一倍了啊。

提高进样量   嗯 是个好办法  多谢指教啦!
7楼2013-04-01 15:03:18
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饺子813

铜虫 (小有名气)

送鲜花一朵
引用回帖:
6楼: Originally posted by weantony at 2013-04-01 14:44:58
建议你进样使用内插管,这样更小的复溶体积都可以,价格不贵的,几十块钱一包一两百个,塑料的;你的定量下限是多少阿

定量下限什么的我没有具体测过,只是大体比较了一下S/N=10的峰高和线性范围的下限,我觉得应该能测出来......
能否请教下您内插管从哪里买?发个链接可以吗?谢谢啦!
8楼2013-04-01 15:06:10
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weantony

铜虫 (正式写手)

引用回帖:
8楼: Originally posted by 饺子813 at 2013-04-01 15:06:10
定量下限什么的我没有具体测过,只是大体比较了一下S/N=10的峰高和线性范围的下限,我觉得应该能测出来......
能否请教下您内插管从哪里买?发个链接可以吗?谢谢啦!...

可能是你的提取溶剂选取的不好 换换别的提取溶剂试试看吧 你直接找你们实验室买塑料离心管的耗材商就行了 他们肯定有的 塑料的不一定有 如果实在没有你可以买国产塑料的pcr管 200ul的那种 把盖子剪掉就可以用了 大小正合适 你可以让耗材商给你送几个样品试试看
9楼2013-04-01 15:41:45
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星星的眼睛

铁杆木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
引用回帖:
3楼: Originally posted by 饺子813 at 2013-04-01 12:21:01
稀释倍数这个问题我还真是没搞明白。。。
假设我原先的血浆样品浓度是400ng/ml,取400ul样品,加50ul内标,加5ml萃取剂,混匀离心×××××,最后用400ul流动相复溶,那么最终样品被稀释了几倍(假定药物没有损失) ...

你这个理解是对的。你提到的两种方法都可以用来处理血样,处理血样的目的就是除去蛋白,并且保证药物浓度可定量;你的回收率较低的话,你试试加大混合的时间和强度,怀疑你药物可能没有完全溶出来;还有就是你看看你你的回收率计算方法是否有错误
10楼2013-04-02 10:25:36
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