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【原创】非变性凝胶电泳原理及应用实例已有1人参与
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电泳、bio-rad 电转化仪及操作 | 专业电子书 | 分子生物学实验 |
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5楼2011-01-10 14:13:24
7楼2011-01-30 10:33:07
2楼2011-01-08 20:27:44
4楼2011-01-10 13:52:36
6楼2011-01-12 15:17:44
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8楼2011-01-30 14:25:44
9楼2011-01-30 14:29:04
冼亮淀粉酶
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★★★★★ 五星级,优秀推荐
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楼主够热情,同时我也想介绍一些我的看法和做法,借楼主宝地,还请不要介意。与楼主不同之处,可能是因为做的蛋白质不同,就当丰富主帖内容,无对错之分。 1、蛋白质形状也会影响在非变性电泳中的泳动速度,不是所有蛋白质都是球状或者几乎是球状的,例如有些有CBM的纤维素酶,或者某些有长链糖基化修饰的蛋白质。 2、即使是变性电泳,蛋白质也可以进行复性尝试,可以复性,但不知道是不是已经100%复性,没计算过比例。例如纤维素酶。 3、是否需要把电泳槽放在冰水混合物中不仅与缓冲液的离子强度有关,还与缓冲液使用次数有关,如果目的蛋白质耐高温,那也不用这样费事。 4、跑完电泳之后要染色,漂洗不用那么多步骤,泡久了蛋白质会有一点跑到溶液里去的,不知道楼主是否测定过漂洗过后有多少蛋白质跑了出来,或者蛋白质带变宽,似乎有一个所谓的“固定”说法。我只用清水荡涤一下就行,大多数情况是从电泳槽里拿出来之后直接考染,没那么多步骤。 既然楼主热情,我就给5星评价。 |
10楼2011-01-30 17:23:06
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11楼2011-01-31 09:59:33
冼亮淀粉酶
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1、“SDS-PAGE体系,但是样品上样前是没有煮沸的”,这样能够使多少蛋白质,或者说你的目的蛋白质保持活性?是否不加变性剂,有助于更多的蛋白质保持活性?有没有想过这个问题?有没有测定过目的蛋白质得率? 2、“而在电泳完成后,用Tris-Hcl缓冲液清洗分离胶,可以充分去除SDS”。既然要清洗,为什么要加SDS? 3、“用Tris-Hcl缓冲液清洗分离胶,可以充分去除SDS,之后再用清水清洗3次。置于50mmol/L的Tris-HCl (pH 7.5)中37℃温育8小时”。有没有考虑过此时能有多少目的蛋白质在电泳胶中?有多少在清洗和温浴中损失掉了? 4、“就可以用R250染色了”。R250应为考染。 5、“在分离胶里是加了明胶的,作用在于胰蛋白酶能降解明胶,按上述步骤处理过后,就可以染色,整块胶被R250染成蓝色背景,而被胰蛋白酶降解的区域不会被染色,仍为透明的”。 没有脱色步骤,是否说明即使不用脱色,考马斯亮蓝也不能把没有明胶的地方染蓝?如果有脱色步骤,那么本来处在明胶降解带处的酶哪里去了? “(这和通常凝胶的考马斯亮蓝染色结果正好相反的)” 说明在漂洗和温浴(保持环境恒定让酶降解明胶)的过程中跑出凝胶了? 请楼主解惑 |
12楼2011-01-31 15:30:22
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13楼2011-01-31 16:35:42
冼亮淀粉酶
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看样子讨论结果已经几乎明了了,我再赘言几句: 1、SDS含量多少对各种蛋白质的变性作用应该是有可能不同的,所以我觉得在做非变性电泳时能否用SDS-PAGE体系,能用的话怎么样用,这值得思考。SDS对蛋白质活性的抑制作用是否都是可逆的,这也值得摸索各人实验各自摸索。 2、对于我来说,如果想知道淀粉酶有没有活力,可以使用更直接的方法,测定酶活力就行,测定过程只需要十分钟,但做一个电泳来验证有没有活性,从样品准备跑胶到染色一系列下来至少5小时。所以楼主说那个实验是用来验证有没有活性的,我就觉得是不是楼主的胰蛋白酶在那个实验阶段是不是仍不适宜测定酶活力?底物是否只用明胶最合适?而不适宜用酪蛋白之类的底物来测定?既然楼主在后面的纯化中要计算得率,那么所用来测定酶活力的方法是什么?能不能代替非变性胶这个耗时长的实验来检测蛋白酶有无活力?会不会更省时? 3、我知道做细胞内全蛋白质的染色可以只染半小时就能清楚看到几十条蛋白质带的,而你所说的胰蛋白酶染色需要较长时间,这是否与染色液有关?考马斯亮蓝与蛋白质结合很稳定的,你染不上,是所用考马斯亮蓝浓度特别低还是染色过程极其短?你说的时间很短,究竟有多短?在提取非变性胶里的蛋白质的时候有人是把胶切碎浸泡,使蛋白质从胶里跑出来的,所以我有一个疑问,你的胰蛋白酶是不是在漂洗和浸泡过程中跑掉了所以只有降解带而没有蛋白质带? 放假了,回家不能做实验不能进库看文献,所以才有空纠结一下小木虫,如果楼主忙就不要管我这个闲人了。 |
14楼2011-01-31 22:01:22
15楼2011-11-18 14:00:52
16楼2012-02-08 14:13:15
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25楼2012-11-28 16:10:27
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26楼2012-11-28 21:42:38
27楼2012-11-28 22:02:33
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28楼2012-11-29 16:04:54
29楼2013-01-09 09:42:30
★★★ 三星级,支持鼓励
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看了楼主的这个经验之谈,虽然没有发现我想要的。不过还是很支持LZ的。因为本人一直做的是Native-PAGE回收蛋白,也来说说我和LZ不同的几点吧。 1.蛋白样品的处理,不煮沸也和LZ一样,不过我们所用的上样缓冲液里面也不再加SDS和巯基乙醇。 2.我们用的是Tris-Hcl,浓缩是6.7,分离是8.8。 3.回收染色,一般目的蛋白的表达量比较 大,所以我们选择是不加Marker。不插上样梳子的做法。 4.回收过程是用0.25%的Kcl染色,看到的最粗的白色条带为目的蛋白。当然,这个蛋白回收后需要加Marker跑SDS-PAGE鉴定大小以及浓度和纯度一个大概了解。 就说怎么多,希望有战友交流。 本人最近被3个蛋白的表达量少弄的焦头烂额,希望各位战友给出经验之谈。不知道能不能留QQ,留一下吧,如果不让留,希望版主修改下。QQ:95227615 |
30楼2013-01-09 16:35:09
31楼2013-01-10 10:51:07
33楼2013-03-27 13:39:23
34楼2013-04-15 08:44:39
35楼2013-05-06 19:55:26
36楼2014-06-14 09:14:02
37楼2014-06-15 13:23:58
38楼2014-08-11 09:29:33
39楼2014-08-11 09:41:57
冼亮淀粉酶
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40楼2014-08-11 11:13:42
41楼2014-08-11 12:58:17
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42楼2014-08-26 13:53:13
43楼2015-04-15 19:39:36
44楼2015-10-22 10:20:07
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45楼2016-05-09 10:54:05
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46楼2016-10-25 16:12:48
47楼2017-03-04 10:57:37
48楼2017-09-03 12:59:50
49楼2018-07-03 10:01:28
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silicare3楼
2011-01-10 13:20
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五星好评
liyu035532楼
2013-01-26 16:04
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