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proteinwang

铜虫 (正式写手)

[交流] 【求助/交流】考马斯亮兰法(Bradford法)测定蛋白浓度事宜请教! 已有7人参与

前段时间做考马斯亮兰法(Bradford法)测定蛋白浓度时,测定OD595nm处的值比较低,现向大家请教一下在此试验过程中的注意事项。
1、考马斯亮兰G―250染料试剂的配制过程中,考马斯亮兰G―250必须先溶于95%的乙醇后,再添加85%的磷酸,最后定容吗?是不是可以把考马斯亮兰G―250,95%的乙醇和85%的磷酸一块放到容器中,然后溶解后定容呢?
2、用1.0mg/ml的标准蛋白质溶液给各试管分别 加入:0、0.01、0.02、0.04、0.06、0.08、0.1ml,然后用无离子水补充到0.1ml。最后各试管中分别加入5.0ml考马斯亮兰 G―250试剂,每加完一管,立即在旋涡混合器上混合,5min后测定其OD595,测得值比较低,且基本没有规律性,不知道是什么原因?
请成功做过相关实验的高手给予解答!
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weiyanbme

木虫 (正式写手)

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小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
lstt09nk(金币+2):欢迎回来多多交流~~ 2010-04-30 20:30
引用回帖:
Originally posted by proteinwang at 2010-04-30 16:38:20:
前段时间做考马斯亮兰法(Bradford法)测定蛋白浓度时,测定OD595nm处的值比较低,现向大家请教一下在此试验过程中的注意事项。
1、考马斯亮兰G―250染料试剂的配制过程中,考马斯亮兰G―250必须先溶于95%的乙醇 ...

看你的过程应该是在比色皿里做的,我是用酶标仪做的,直接在96孔板里做,你的方案我在网上也找到过,最后再96孔板里做的,也不是很好,后来把总体积减少了,200μl的染液,30μl的蛋白溶液,测得的结果线性还是不错的;当然有时候你做出趋势曲线后,发现要测得的蛋白浓度无法计算,就是说你的稀释度还要降低,所以一般最少要做个0.1以及1.0的标准曲线
另外,我配制的染液根本没定容,直接用量筒量取体积数,做的结果线性还是不错的,最后的浓度也跟我用其他的方法相差不大;
建议再做一次,本来这个方法就不是很精确的,看看文献,多是BCA法,为什么不出现这个方法呢?想想就明白了,这个方法也就平时做起来简单些,要发paper还是的得试剂盒了
3楼2010-04-30 19:44:11
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lihan7296

金虫 (小有名气)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
是不是蛋白含量低了?
我是用0.1mg/mL 的蛋白溶液,每次加0.1-1mL做标曲

[ Last edited by lihan7296 on 2010-4-30 at 19:43 ]
seizetheday
2楼2010-04-30 19:41:33
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richujs

木虫 (正式写手)

★ ★
小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
lstt09nk(金币+1):感谢交流~~ 2010-05-01 21:16
1.行不行你多配一份,小分量的,对照一下就行
2.我记得生化实验里边说过考马斯亮兰法有两个线性范围,1~10,10~100微克每毫升,蛋白溶液的体积和染液的比例为1:4,你做的是1:50
思想是能力和力量的源泉
4楼2010-05-01 10:32:34
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marc0907

金虫 (小有名气)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
前一段时间,我做的也不是很好啊!同样请教
5楼2010-05-02 13:05:50
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