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kxq19891208金虫 (正式写手)
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求助HPLC方法
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化合物的方法怎么设定,有大众方法吗? 例如邻二萘酚。谢谢。以前上班看到分析是根据化合物极性来设定,谢谢大家了。 |
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【答案】应助回帖
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kxq19891208: 金币+10 2013-09-29 21:13:47
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kxq19891208: 金币+10 2013-09-29 21:13:47
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我整理了仪器信息网的一个帖子,希望对你有用。转帖(http://bbs.instrument.com.cn/shtml/20090404/1821143/) 1 文献查阅 文献报道的测定该化合物的主要方法是液相色谱-紫外检测,只有一篇是液质联用的方法,考虑到这个项目样品多(2000多个),测定周期长和成本等,领导决定让我用液相来测定。 查阅文献,我们可以从中获得一些基本的信息,如色谱柱类型、流动相性质、检测波长、前处理方法等。根据自己实验的要求,可能还要关注一下最低定量限、检测时间的长短等等信息。必要时可以做点笔记,把最关心的信息记录下来。 根据文献获得的主要信息: 1)色谱柱:均为C18,长度有150mm,200mm,250mm,内径和粒径分别为4.6mm和5μm; 2)流动相:有机相是甲醇或乙腈,水相多为磷酸和磷酸盐缓冲溶液,pH值3~4; 3)检测波长:225nm或者275nm; 4)前处理方法:沉淀或者提取; 5)最低定量限:0.2 μg/mL。;分析时间(液相):13min左右。 2 仪器的选择 很多时候,仪器是没的选的,如果有条件的话,可以选择性能稳定的、操作方便的或者自己比较熟悉的仪器。当然还可以根据仪器一些自身的特点来选择,比如:如果流动相里面既有甲醇还有乙腈,尽量避免用Waters的,单向阀比较容易出问题;如果要跑梯度,尽量选择是高压混合的。 3 色谱条件的建立 这是过程可能很短很简单,也可能很漫长很费事,关键和很多因素有关,如化合物的性质、实验室现有的条件、成本、检测对灵敏度的要求等等,总之,就是要在满足检测要求的前提下,分析测试时间越短、成本越低、操作越简单越好。 1)检测波长的选择 文献报道的检测波长有225nm和275nm。一般说来(也有化合物例外),化合物在低波长段信号响应会好些,但是干扰也多,随着波长的增加,干扰会逐渐降低。不确定这两种波长的响应究竟差多少,我就拿紫外扫描了一下,的确225nm左右有最大吸收,而275nm处吸收太低,不可能满足我检测的要求,所以选择225nm作为我的检测波长。 很希望275nm处有强的紫外吸收,这样就算比225nm处稍微响应低些,但是干扰少,基线平,色谱条件建立起来容易啊,可惜…… 2)色谱柱、流动相和内标的初步选择 选择色谱柱主要是参考文献和实验室现有色谱柱的情况, C18柱(ODS柱)适合大多数非极性样品的分析,如果样品极性大,可以选择氨基柱、腈基柱和HILIC柱等,也可以选择正相系统。只是从反相系统向正相系统过渡的时候要注意,不然会引起整个系统的堵塞。 我需要测定的物质A极性不大,文献报道基本都是C18柱,所以就用我们实验室最常用、储备也比较多的几根柱子开始摸条件,如Waters Symmetry C18,Agilent ZORBAX SB C18等(当然也是考虑了流动相的性质)。 流动相考虑到成本和毒性,决定先试甲醇,水相就参考文献配了25mmol/L的KH2PO4溶液(pH3.0)。 内标先试用了实验室现有的化合物,但是均与A的保留时间差的比较大,且相对靠前(血浆样品容易有干扰)。后来选用了文献报道的化合物B,出峰在A的后面,干扰少。 总共比较了Waters Symmetry C18(4.6×150mm, 5μm) 、Waters Symmetry C18(4.6×75mm, 3.5μm)和Agilent ZORBAX SB C18(4.6×150mm, 5μm)三根柱子,最后选择了第二根色谱柱(尽管没有文献报道是用这么短的柱子的),原因是: 1. Waters的这两根柱子都是Symmetry C18的,差别是长度和粒径,短柱子样品出峰快,样品与内标分离效果好,但是就是柱压高些。 当用150mm的柱子进样,甲醇:水相=72:28(v:v),1ml/min, 225nm, 柱温35℃时,样品A的保留时间是tR=8.2min,内标B的保留时间tR=14min左右。这样的进样时间对于我来说太长了, 2300多个样品,保留时间的长短直接影响到我的进样时间,我希望保留时间再短些,这就意味着有机相的比例还要增加,但是由于水相有盐,有机相太高怕析出,而且成本也会增加,所以就选择了短柱。 2. Agilent的柱子样品和内标的分离效果没有远没有Waters的好,如果要分开,那么两者的保留时间又会大于10min,但是柱压明显比Waters的低。 3)色谱条件的优化及前处理方法的选择 我的原则就是前处理越简单越好,分析时间越短越好,分析成本越低越好。 1.先拿样品及内标的对照品来初步确定色谱条件 当然这只是初步看一下,看看标准品进样,灵敏度怎样,是否需要浓缩样品,内标和样品峰分的怎么样等等。 2.根据检测要求选择最方便的前处理方法 根据我的检测要求,LLOQ最少要做到500ng/mL,当然能低更好。看看我的灵敏度,用蛋白沉淀法应该没有问题,当然前提是没有内源性干扰。于是试了几种最常用的沉淀剂:甲醇、乙腈和甲醇硫酸锌。 一般三者加的量是甲醇硫酸锌最少、乙腈次之、甲醇最多,当然是为了保证蛋白能充分沉淀。加的沉淀剂越少,样品稀释就越少,可能就会有更高的灵敏度。 结果,硫酸锌沉淀响应最好,峰也窄,而甲醇和乙腈沉淀样品峰响应相差不大,但乙腈沉淀峰更宽些,因此先选择用甲醇硫酸锌沉淀。 3.优化色谱条件 确定好了色谱柱、流动相、内标和前处理方法,下面就是要正式开始优化条件了,有干扰的避干扰,能缩短分析时间就缩短分析时间。 1)首先调节流动相比例、柱温,使得样品峰和内标能够分开,且总的分析时间在10min以内。 2)做空白血浆加标的样品,看有无干扰。果然,不出所料,样品峰和内标处均有干扰,继续优化流动相比例、柱温、流速等参数,样品峰处基本无干扰了,但是干扰峰始终在内标峰出徘徊。 3)下面开始了排除血浆干扰的优化工作。 A.走梯度:甲醇走梯度,基线波动太大,有机相换成乙腈,样品峰响应下降,峰变宽,也不合适,失败。 最后,做个小结,也算对用HPLC做生物样品分析(血浆、尿、组织等)的版友介绍一下我的个人体会,供大家参考: 1 首先就是要查阅相关资料,如文献等,了解你要测化合物的性质,根据文献来选择你的初始条件。比如色谱柱、流动相、前处理方法,还有检测器等等。 2 了解液相的基本原理和基本操作,这是你做好液相、用好液相的前提。比如什么样品可以用反相、什么样品用正相系统来检测,反相系统加大有机相的比例峰会怎么变化;柱温、流动相pH值、溶剂对你的样品峰会有什么影响;遇到一些简单的仪器问题怎么处理、一些仪器参数是什么意思、对你的样品峰有什么影响等等,当然这些是慢慢学习的过程,学的越多,你会发现你建立方法用的时间越短、走的弯路越少。当然,我也在慢慢的学习中。 3 知道各种前处理方法及其优缺点,比如沉淀剂的种类、加入的比例,适合的化合物性质。常用的提取溶剂有哪些,适合提取的化合物的极性等。 4 要预先估计你所需要的LLOQ,根据这个LLOQ来优化你的色谱条件。比如灵敏度足够,可以用沉淀,不够可以用提取,提取浓缩的比例根据LLOQ来定。当然还可以其他的辅助手段,比如加大进样量、用梯度洗脱的方式等等。 5 做液相可能最头疼的就是干扰,用紫外检测器特别是在低的检测波长段,可以说是杂草丛生,所以一般分析时间都比较长。改用提取后,可能会好些。如果可以,宁愿牺牲一些灵敏度而选择相对高一些的检测波长。荧光检测,干扰就很少。多试不同来源的空白基质,确保没有干扰。有条件,也像我这样,买来的空白血浆和受试者的空白最好也试一下,以免不同(这样的情况非常非常少见)。 先写这么多,比较乱,有空再来上点图谱。其中有写的不当的地方,请大家批评指正。 |

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