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qlw4567铁杆木虫 (著名写手)
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[求助]
求助——SDS-PAGE的问题
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如图，我跑的胶好几次都是这样。。。。。上面从下到上分别是3个BSA，3个OVA，1个LYZ，1个分子量标记。可以我做的全是一片模糊。不明白为什么，我前几次也出现过这个现象。求大哥大姐们帮忙~~~   432_395284000_IMG_0269.JPG [ Last edited by 1949stone on 2013-7-19 at 08:10 ] |
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凌波丽
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【答案】应助回帖
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感谢参与，应助指数 +1
kx444555: 金币+5, 鼓励交流 2013-07-12 11:52:05
qlw4567: 金币+5, ★有帮助, 您这个回答，我在网上其他地方也看过，首先，缓冲溶液是按照网上的配方来的，pH都由pH计测试过。第二，我的样品溶解液配方为SDS100mg，巯基乙醇0.1mL，甘油1mL，溴酚蓝2mg，0.2mol/Lph7.2磷酸缓冲液0.5mL，然后加水定容至10mL。再就是电极方向的问题，我电极安装应该没有问题，因为我也做出来过正常现象的凝胶。我的染色液是0.25g的考马斯亮蓝，454的50%的甲醇和46mL的冰乙酸。然后我一般泡30min左右。电泳时间一般跑到底要8个小时。但是我的板子很大，是20cm的板。 2013-07-12 15:40:33
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kx444555: 金币+5, 鼓励交流 2013-07-12 11:52:05
qlw4567: 金币+5, ★有帮助, 您这个回答，我在网上其他地方也看过，首先，缓冲溶液是按照网上的配方来的，pH都由pH计测试过。第二，我的样品溶解液配方为SDS100mg，巯基乙醇0.1mL，甘油1mL，溴酚蓝2mg，0.2mol/Lph7.2磷酸缓冲液0.5mL，然后加水定容至10mL。再就是电极方向的问题，我电极安装应该没有问题，因为我也做出来过正常现象的凝胶。我的染色液是0.25g的考马斯亮蓝，454的50%的甲醇和46mL的冰乙酸。然后我一般泡30min左右。电泳时间一般跑到底要8个小时。但是我的板子很大，是20cm的板。 2013-07-12 15:40:33
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提示五点： 1.缓冲溶液配好了吗？ 在SDS-PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris-HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9;而电泳缓冲液使用的Tris-甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低;而CL离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分子就介于二者之间泳动。由于导电性与电场强度成反比，这一区带便形成了较高的电压剃度，压着蛋白质分子聚集到一起，浓缩为一狭窄的区带。当样品进入分离胶后，由于胶中pH的增加，呈碱性，甘氨酸大量解离，泳动速率增加，直接紧随氯离子之后，同时由于分离胶孔径的缩小，在电场的作用下，蛋白分子根据其固有的带电性和分子大小进行分离。 样品如何处理? 2.样品处理的怎么样？ 根据样品分离目的不同，主要有三种处理方法：还原SDS处理、非还原SDS处理、带有烷基化作用的还原SDS处理。 （1）还原SDS处理：在上样buffer中加入SDS和DTT(或Beta巯基乙醇)后，蛋白质构象被解离，电荷被中和，形成SDS与蛋白相结合的分子，在电泳中，只根据分子量来分离。一般电泳均按这种方式处理，样品稀释适当浓度，加入上样Buffer，离心，沸水煮5min，再离心加样。 （2）带有烷基化作用的还原SDS处理：碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的并经久牢固的保护SH基团，得到较窄的谱带;另碘乙酸胺可捕集过量的DTT，而防止银染时的纹理现象。100μl样品缓冲液中10μl 20%的碘乙酸胺，并在室温保温30min。 （3）非还原SDS处理：生理体液、血清、尿素等样品，一般只用1%SDS沸水中煮3min，未加还原剂，因而蛋白折叠未被破坏，不可作为测定分子量来使用。 3.电极方向对了吗？ 4.染色程序对不对？ 5.电泳时间是不是长了？ |
3楼2013-07-12 11:49:19
kx444555
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qlw4567
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4楼2013-07-12 15:31:12
qlw4567
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5楼2013-07-12 15:47:33
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