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xingfuxiaoyu

新虫 (初入文坛)

[求助] 用Hoechst33342/PI 双染做流式,居然只检测到坏死细胞,这是个什么状况

今天做了流式,是用凯基的Hoechst33342/PI 双染试剂盒来检测细胞凋亡,但是结果出来之后发现,坏死细胞特别多,凋亡的细胞就没几颗,而且散点图显示,细胞特别分散,我不知道这是个什么原因?
我的是贴壁细胞,我是在染完之后才消化的,然后直接用培养基终止消化,吹打成单个细胞,然后去检测;在染色之前我用多聚甲醛对细胞进行了固定?那这个固定队细胞坏死有没有很大影响呢?
Hoechst33342 它可以穿过活细胞的膜,区分凋亡和正常细胞,但在我做的流式结果里,怎么没有差别呢?求指点。谢谢啊
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2011加油

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+3, 鼓励交流经验 2012-06-15 13:50:16
我发现一个问题,楼主的细胞是先加染料,再消化。这顺序应该是相反了啊。一般都是先消化,再加染料。我查证了一下该产品说明书,确实如此。http://www.keygentec.com.cn/productdetails/168.html
希望该信息对你有帮助呀。

另外,做细胞凋亡实验,选用Annexin V-FITC/PI双染检测,更常见一些。这种试剂盒,能检测到正常细胞、早晚期凋亡细胞、坏死细胞以外,还可以反应机械性损伤的细胞,共分为为四个部分。而你所采用的试剂盒,反映出来的只有前三部分。

好了,祝你下回实验成功!
每天都是新开始,2011,要好好努力!
2楼2012-06-14 22:17:31
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tonyprague1967

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+2, 鼓励交流 2012-06-15 13:50:27
你的PI染的时间会不会太长呢?另外你为什么要用多聚甲醛固定呢?不是应该先消化,再染色么,而且这两个染料的主要的一个区别是一个膜通透,一个不通透。我觉得你的试验系统是不对的。所以你的结果很多都是坏死细胞
淡定……
3楼2012-06-14 23:18:47
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tonyprague1967

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

另外,需要看看你的阴性对照,就是没染的细胞的情况。如果你的阴性对照大部分都是坏死,那你肯定是PI的问题了。
淡定……
4楼2012-06-14 23:20:16
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xingfuxiaoyu

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 2011加油 at 2012-06-14 22:17:31
我发现一个问题,楼主的细胞是先加染料,再消化。这顺序应该是相反了啊。一般都是先消化,再加染料。我查证了一下该产品说明书,确实如此。http://www.keygentec.com.cn/productdetails/168.html
希望该信息对你有 ...

真的很感谢你。
其实到底是先加染料还是先消化的问题,我也查了很多,基本上都是先消化后染色,但是我认为如果先消化的话,终止消化后得离心,用PBS洗也得离心,每次染完清洗都得离心,这样对细胞的损伤太大,也会造成细胞的大量流失,我那个是贴壁细胞,我如果先染色在消化,我就基本不会去离心,那样对细胞造成的损伤比较小,当然我一直没有想出这样做的缺点在哪里,呵呵所以就这样做了。
你传的说明书我看过了,呵呵,谢谢你,这个我也是研究了好久,但是确实没找到到底一定是要先消化吗?呵呵
PI对细胞的毒性比较大,我只在常温下避光孵育10分钟,我不知道这个时间是否合适?
Hoechst 相对于PI 来说,对于膜是有很强的通透性,但是就是因为只有当膜不完整时,PI 才能进入嵌入到DNA中,使坏死细胞着色,那我这个坏死的也太多了。
至于用不用多聚甲醛固定,我今天重新做了一次,没固定,但是结果和昨天做的还是一样的,所以我觉得重点不在多聚甲醛上。
阴性对照是完全都不染,里面的坏死细胞也挺多的,但是我不明白怎么是PI 的问题呢?嘿嘿
谢谢你啊
5楼2012-06-15 11:22:07
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2011加油

银虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

首先,你决定选用该试剂盒,就应该严格按照说明书的操作进行,不用怕麻烦,不然,实验中出现问题时,容易耽误时间和浪费材料。这份说明,说到的操作蛮详细的,应该有小小的指导作用,呵呵。
另外,出现坏死细胞较多,可能的原因,我暂且肯定不了。我顺便查找了这种试剂盒是否有注意事项,找到丁香园的一个帖子:http://www.biomart.cn/infosupply/6530705.htm,它在这里面提到,消化细胞时注意(贴壁细胞用不含EDTA的胰酶消化收集,胰酶消化时间不易过长,以防引起假阳性。),一般不含EDTA的胰酶,可以自己配制或购买现成的。胰酶是否需要加EDTA要看具体做什么实验,所以你也可以再找找相关的帖子,多了解一下。
成功的实验,需要好的准备,所以多花点时间,先了解实验的方法原理,注意事项,再度出发,呵呵。
每天都是新开始,2011,要好好努力!
6楼2012-06-15 17:46:21
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l_h_10

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
你的最关键的问题是 用多聚甲醛固定了,固定之后,活细胞都变成了死细胞了。我觉得Hoechst33342/PI 双染这个试剂盒更适用于染色后在荧光显微镜下观察,我用过这个方法,在显微镜下观察。并且这个方法我们习惯是,细胞先染PI,让PI进入膜有损伤的细胞,然后多聚甲醛固定,接着染hoechst 33342,让其进入所有细胞,然后放到荧光显微镜下观察。在hoechst和PI的通道上分别拍照片,然后把照片叠加。
个人认为用流式测细胞凋亡的话,还是用AV/PI的试剂盒检测,AV染早期凋亡的细胞,PI染晚期凋亡和坏死的细胞,这个试剂盒我们一直在用。
7楼2012-06-16 14:45:38
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l_h_10

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

还有个问题,就是先用胰酶消化,后染色的原因,我认为主要是染料的浓度一般都会高一些,所以染完后都会进行离心洗涤,将未与细胞结合的染料洗掉,要是不洗的话,背景值太高,导致各个组别的差异不明显。另一种染料染完后,也要洗去多余的染料的。
你讲得先染色,再消化这个方法。我没试过,但是我觉得存下面问题:
染料进入细胞后,进行消化的话,细胞在非正常状态下,可能经受不了胰酶,胰酶消化过的话,也会对细胞膜造成损伤的,你的未染组大部分是坏死细胞,可能就是因为胰酶效果过度的问题。
建议你用先消化,后染色的方法试一下。注意消化不要过度,吹打轻柔,染料的特点都在细胞膜的通透性上,一定注意不要损伤细胞膜。
8楼2012-06-16 15:02:57
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xingfuxiaoyu

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
8楼: Originally posted by l_h_10 at 2012-06-16 15:02:57
还有个问题,就是先用胰酶消化,后染色的原因,我认为主要是染料的浓度一般都会高一些,所以染完后都会进行离心洗涤,将未与细胞结合的染料洗掉,要是不洗的话,背景值太高,导致各个组别的差异不明显。另一种染料染 ...

恩,谢谢你啊,我会在尝试下的,谢谢你
9楼2012-06-16 22:52:32
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xingfuxiaoyu

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
6楼: Originally posted by 2011加油 at 2012-06-15 17:46:21
首先,你决定选用该试剂盒,就应该严格按照说明书的操作进行,不用怕麻烦,不然,实验中出现问题时,容易耽误时间和浪费材料。这份说明,说到的操作蛮详细的,应该有小小的指导作用,呵呵。
另外,出现坏死细胞较多 ...

恩,谢谢你啊,我在好好查查相关的资料,嘿嘿 有你们真好
10楼2012-06-16 22:53:55
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