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用Hoechst33342/PI 双染做流式,居然只检测到坏死细胞,这是个什么状况
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今天做了流式,是用凯基的Hoechst33342/PI 双染试剂盒来检测细胞凋亡,但是结果出来之后发现,坏死细胞特别多,凋亡的细胞就没几颗,而且散点图显示,细胞特别分散,我不知道这是个什么原因? 我的是贴壁细胞,我是在染完之后才消化的,然后直接用培养基终止消化,吹打成单个细胞,然后去检测;在染色之前我用多聚甲醛对细胞进行了固定?那这个固定队细胞坏死有没有很大影响呢? Hoechst33342 它可以穿过活细胞的膜,区分凋亡和正常细胞,但在我做的流式结果里,怎么没有差别呢?求指点。谢谢啊 |
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l_h_10
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【答案】应助回帖
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你的最关键的问题是 用多聚甲醛固定了,固定之后,活细胞都变成了死细胞了。我觉得Hoechst33342/PI 双染这个试剂盒更适用于染色后在荧光显微镜下观察,我用过这个方法,在显微镜下观察。并且这个方法我们习惯是,细胞先染PI,让PI进入膜有损伤的细胞,然后多聚甲醛固定,接着染hoechst 33342,让其进入所有细胞,然后放到荧光显微镜下观察。在hoechst和PI的通道上分别拍照片,然后把照片叠加。 个人认为用流式测细胞凋亡的话,还是用AV/PI的试剂盒检测,AV染早期凋亡的细胞,PI染晚期凋亡和坏死的细胞,这个试剂盒我们一直在用。 |
7楼2012-06-16 14:45:38
【答案】应助回帖
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感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+3, 鼓励交流经验 2012-06-15 13:50:16
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我发现一个问题,楼主的细胞是先加染料,再消化。这顺序应该是相反了啊。一般都是先消化,再加染料。我查证了一下该产品说明书,确实如此。http://www.keygentec.com.cn/productdetails/168.html 希望该信息对你有帮助呀。 另外,做细胞凋亡实验,选用Annexin V-FITC/PI双染检测,更常见一些。这种试剂盒,能检测到正常细胞、早晚期凋亡细胞、坏死细胞以外,还可以反应机械性损伤的细胞,共分为为四个部分。而你所采用的试剂盒,反映出来的只有前三部分。 好了,祝你下回实验成功! |

2楼2012-06-14 22:17:31
tonyprague1967
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3楼2012-06-14 23:18:47
tonyprague1967
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4楼2012-06-14 23:20:16













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