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阳光雨露118

新虫 (正式写手)

[求助] 目的蛋白将His tag包裹,蛋白不与镍柱结合?急求纯化蛋白的大神指点! 已有2人参与

如题,载体用peasy-E1,前段带6个His标签,因不挂柱,又在后端加6个His标签,测序正确,能够表达且跑蛋白胶表达量很高,酶活也有,就是过镍住时,结合不上去,目标蛋白在流穿的bunding buffer 中,分析是:His tag被包裹在目的蛋白里,如何解决这个问题???得不到高纯度的蛋白,实验被迫中止,急求过镍柱的高手指点!!!
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回帖支持 ( 显示支持度最高的前 50 名 )

晋鹏

版主 (知名作家)

【答案】应助回帖

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感谢参与,应助指数 +1
阳光雨露118: 金币+50, ★★★很有帮助 2017-08-07 17:42:01
(1)超声的功率不对(太大,蛋白炭化,太小,蛋白没有释放) 策略:改变超声功率,并在超声前加入溶菌酶。

(2)样品或者是结合缓冲液不正确: 策略:检测pH 及样品和结合缓冲液的组成份(EDTA等)。确保在溶液 中鳌合剂或强还原剂的浓度及起始咪唑的浓度不是太高。 ·

(3)组氨酸的标签没有完全的暴露 策略:在变性条件下(用8M脲,6M盐酸胍,1%SDS)并加入1-2mMDTT 进行纯化。

(4)His标签丢失,策略1:WB或者anti-his的抗体检查His是否表达,上游构建,改变his-tag的位(C-terminal or N-terminal),必要时增加his个数(常用6-10个)。策略2:孵育的时间不够,降低流速和增加孵育的时间。策略3:改变螯合的金属离子,寻找到最佳的结合金属离子。

Ni2+通常是从宿主细胞蛋白中纯化大多数(组氨酸)6 标记的重组蛋白质的首选金属离子,也是一般最常用的离子。蛋白和金属离子之间的结合强度受几种因素影响,包括长度、位置、亲和标记在蛋白的暴露程度、所用离子的类型、以及缓冲液的pH,因此一些蛋白用其他离子可能更容易地进行纯化而不用Ni2+。可以利用Hitrap IMACHP来筛选不同的金属离子,具体应用实例请参考《Recombinant Protein Purification Handbook》。

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及时行乐,人生不留遗憾!
6楼2017-08-06 23:39:25
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小书生gg

新虫 (小有名气)

引用回帖:
5楼: Originally posted by 阳光雨露118 at 2017-08-06 23:01:38
您好,可这个蛋白后续实验要求不可变性
...

原核表达很多蛋白都会过量表达。蛋白短时间内大量表达而来不及正确折叠,你先把你现有的表达时间缩小一倍看看。如果还不能解决,你只能想办法把把结构打开,再重新折叠。对了,你的蛋白不挂柱,但能溶解吗?有没有沉淀啥的?

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8楼2017-08-07 08:01:37
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evpmf

新虫 (初入文坛)

换一种纯化方式 疏水 离子等 镍柱不一定最有效

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10楼2017-08-07 08:32:57
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普通回帖

水吟秀

铁虫 (初入文坛)

2楼2017-08-06 16:52:43
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小书生gg

新虫 (小有名气)

一,减少表达时间看看。二,变性,再复性。

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3楼2017-08-06 22:40:46
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阳光雨露118

新虫 (正式写手)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 水吟秀 at 2017-08-06 16:52:43
缓冲液是什么?

柠磷缓冲液

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4楼2017-08-06 23:00:22
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阳光雨露118

新虫 (正式写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 小书生gg at 2017-08-06 22:40:46
一,减少表达时间看看。二,变性,再复性。

您好,可这个蛋白后续实验要求不可变性

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5楼2017-08-06 23:01:38
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armigera

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
引用回帖:
5楼: Originally posted by 阳光雨露118 at 2017-08-06 23:01:38
您好,可这个蛋白后续实验要求不可变性
...

可以变性纯化,得到蛋白后再复性。用酶活来标记复性蛋白比率。

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7楼2017-08-07 06:08:00
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小书生gg

新虫 (小有名气)

不好意思,上面说的把蛋白当成原核的来处理了。如果是原核表达,你可以参照一下,如果不是你就变性一下,再复性。实在不行你就重新构建到一个新载体中试试。

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» 本帖已获得的红花(最新10朵)

9楼2017-08-07 08:09:59
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