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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

[求助] 怎样提高融合蛋白表达量 已有6人参与

在BL21菌株中诱导表达蛋白,用的是GST标签,做了几次发现上清里面诱导的蛋白很少,挂柱洗脱后几乎看不见条带。沉淀(包涵体)蛋白还比较多。诱导条件试过IPTG 0.5mM 16度过夜,但IPTG 改成0.3mM 16度过夜后总体诱导表达量就减少了,上清沉淀都少,该怎么解决呢?最后蛋白是要用来测酶活的,所以诱导纯化过程不能破坏酶活。请有经验者帮助!
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

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2楼: Originally posted by wufeng1991 at 2015-08-02 21:32:35
把iptg改回来不就行了,加到1mM

可是IPTG浓度大了不是更容易形成包涵体吗?第一次用0.5mM的时候就很多包涵体,上清里面很少。
3楼2015-08-03 08:40:19
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

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6楼: Originally posted by cs冰凝 at 2015-08-03 18:56:24
通过变性再复性,这样酶活也可以保证!不知你破菌是用超声还是高压破碎机?

我破菌用的是超声。请问怎样变形复性呢?
8楼2015-08-04 14:40:04
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7楼: Originally posted by ksws0465326 at 2015-08-03 20:13:41
像楼上说的,不知道楼主摇菌转速多少,太快也不好,我们实验室常用170rpm,我也做过几次BL21的GST蛋白提取,加的时0.4mM的IPTG,30度3小时,回收量还不错,还有,根据培养基的组成不同,也会很大程度的影响蛋白产生 ...

非常感谢!你的培养基成分还真复杂,比我们实验室用的复杂多了,我们用的是B培养基,1 L培养基里含有 10g NaCl, 10g 胰蛋白胨, 5g酵母提取物。就这几样,成分很简单,不知道是不是培养基的影响。下次可以考虑试试你的配方。
9楼2015-08-04 14:44:03
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4楼: Originally posted by wufeng1991 at 2015-08-03 13:11:46
个人感觉gst促溶能力并不是很好,不如pet32a和sumo,mbp

我看32a的图谱含有His,S, Trx三种标签,请问你一般用哪种?
11楼2015-08-04 14:48:02
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至尊木虫 (正式写手)

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10楼: Originally posted by 生物小猴子呢 at 2015-08-04 14:45:57
你可以从IPTG的浓度、诱导的温度、诱导的转速以及诱导时间等条件进行摸索,IPTG浓度过高会使得包涵体含量增加,BL21是大肠杆菌,最适温度37℃,但是建议往下降温度,温度过高合成蛋白速率过快就有可能造成目的蛋白来 ...

我诱导一般16度过夜,温度已经挺低了。请问Transtta(DE3)细胞表达的蛋白可溶性怎样呢?
12楼2015-08-04 14:53:04
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至尊木虫 (正式写手)

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14楼: Originally posted by wufeng1991 at 2015-08-04 20:24:44
trxa是促溶的,另外两种是用来纯化的
...

哦,原来是这样。谢谢,我试试。
16楼2015-08-05 07:55:45
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15楼: Originally posted by whb21 at 2015-08-05 07:20:12
bl21并非全能表达系统 尤其是一些分子量较大的真核蛋白 在表达时容易形成包涵体 调整诱导表达条件确实能够提高可溶性表达 但程度有限 可以尝试更换表达系统

我的蛋白也不大啊,就30多KD。
17楼2015-08-05 07:56:30
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7楼: Originally posted by ksws0465326 at 2015-08-03 20:13:41
像楼上说的,不知道楼主摇菌转速多少,太快也不好,我们实验室常用170rpm,我也做过几次BL21的GST蛋白提取,加的时0.4mM的IPTG,30度3小时,回收量还不错,还有,根据培养基的组成不同,也会很大程度的影响蛋白产生 ...

请问你破菌时超声一般用什么条件?
18楼2015-08-05 07:57:51
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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

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6楼: Originally posted by cs冰凝 at 2015-08-03 18:56:24
通过变性再复性,这样酶活也可以保证!不知你破菌是用超声还是高压破碎机?

请问你破菌时用什么条件?
19楼2015-08-05 07:58:17
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