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王雨云

金虫 (小有名气)

[求助] 关于羧基聚苯乙烯微球偶联抗体后的稳定性问题 已有1人参与

0.2um的羧基聚苯乙烯微球,通过EDC活化后偶联一个抗体,微球抗体复合物4度保存稳定性差。主要是4度保存后荧光信号会明显高于刚稀释好的微球的荧光信号,分析原因是聚苯乙烯微球的疏水作用,静电作用等可能导致微球包被抗体后发生部分凝集(肉眼不可见的凝集),通过优化标记抗体的浓度,缓冲液pH,EDC用量等均未能改变微球抗体复合物4度保存荧光信号升高的问题,望各位虫友给点好建议啊!如何稳定保存!
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youjihuaxue2000

银虫 (小有名气)

商家已经主动声明此回帖可能含有宣传内容
您提到:(1)荧光信号增强。很可能荧光物质泄漏出来,直接和蛋白质相互作用了,可能两者存在能量共振转移,这会使荧光增强。你不妨问问厂家,微球里面的荧光染料是不是疏水的?并仔细观察:(a)体系是否用了极性较强的有机物?(b)试剂瓶壁或表面是否有一层油一样的东西?(2)羧基微球理论上在没有EDC存在的情况下也应该可以跟带氨基的抗体反应。是的,通过离子键相互作用,但很弱。实际上,即使有EDC活化的情况下,微球首先通过被动吸附和蛋白相互作用,然后才发生共价交联。这些非共价的结合,是后来不稳定的根源之一。你不妨在封闭后加一步3~5min的超声,那些不稳定的结合,自然会脱离下来。

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
6楼2015-03-01 01:42:06
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查看全部 15 个回答

youjihuaxue2000

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
王雨云: 金币+10, ★★★很有帮助, 谢谢! 2015-02-02 12:59:55
200nm荧光,你是做免疫层析吗?造成不稳定的原因复杂,但都能归结为微球表面电荷被平衡掉了。两微球靠彼此之间的电荷斥力分开,使整个体系维持溶胶状态。从EDC的加入开始,这种电荷平衡就被打破,后面加入抗体、封闭剂的时候,如果不能回复电荷平衡,体系就是不稳定的。所以,不妨试试:(1)选择表面电荷更多的微球,EDC只活化部分羧基,剩下部分来提供负电荷;(2)选择带同种电荷的blocker。(3)还得找个有经验的人手把手教你,细节很重要,呵呵。
欢迎交流huxuhua2008@163.com

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
2楼2015-02-02 08:00:03
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王雨云

金虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by youjihuaxue2000 at 2015-02-02 08:00:03
200nm荧光,你是做免疫层析吗?造成不稳定的原因复杂,但都能归结为微球表面电荷被平衡掉了。两微球靠彼此之间的电荷斥力分开,使整个体系维持溶胶状态。从EDC的加入开始,这种电荷平衡就被打破,后面加入抗体、封闭 ...

是做免疫层析的,标记pH做过6.0-9.0,用BSA作为封闭蛋白,理论上已经算选择的带同种电荷的blocker了吧。但还是没有改善2-8度保存荧光信号增强的问题。
3楼2015-02-02 13:21:12
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youjihuaxue2000

银虫 (小有名气)

pH太高。你可查一下EDC和NHS的水解pH,你把pH调这么高,我怀疑几乎没有共价交联。5.4是最佳的,但不适合。一般用6~6.5。

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
4楼2015-02-03 07:44:46
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