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hraikeyan

金虫 (小有名气)

[求助] 这算是包涵体吗?

这个问题是困扰我好长时间了。我构建了一个重组菌,全细胞活性很高,但是在破碎这一步,怎么也破不出来,沉淀里目标蛋白很多,上清很少,曾怀疑过是包涵体,但是破碎后沉淀还是有很高的活性(用200w功率破时,比上清的活性高)。
我做的尝试:
1我试过改变破碎条件,增加功率和破碎时间。当增加到400w时,上清活性上去了(比全细胞活性差远了),沉淀活性低了,但是蛋白电泳显示沉淀里的蛋白还是特别多,上清少。这是怎么回事啊?是包涵体吗?
2.怀疑是包涵体,所以试着改变诱导条件,降低IPTG浓度,甚至用乳糖诱导,降低诱导温度,但是还是这样,破碎液很白,不透明,蛋白电泳结果也是这样。但是我用未诱导的重组菌做对比,发现破碎液透亮了。
请问,这一系列的实验,能说明是包涵体吗?
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nothing isimpossible
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cicelyzh

铁杆木虫 (职业作家)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+3, 鼓励积极热心应助,欢迎热心虫虫 2013-05-28 08:25:47
hraikeyan: 金币+2, ★★★很有帮助 2013-05-30 16:37:35
我觉得应该是包涵体。未诱导的菌超声能破,说明超声程序是没问题的。当然,不排除诱导后的菌体不如为诱导的好破。你的上清和沉淀跑电泳,并不能说明蛋白在上清和包涵体里面的比例。因为存在一个破损率的问题。未破的菌体用SDS上样缓冲液处理后会破碎。你应该在超声前取一定体积的菌体。用上样BUFFER直接破碎菌体得全菌蛋白。然后用超声后同样体积的上清跑可溶蛋白。再比较目的蛋白在上清和全菌蛋白中的比例。
如果你已经尝试了改变诱导条件,效果都不理想,你可以试试直接纯化包涵体后复性。如果能获得活性蛋白,就不用纠结是在上清里还是沉淀里的问题了。
2楼2013-05-28 08:17:36
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edoz1986

新虫 (小有名气)

【答案】应助回帖


感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+1, 鼓励交流 2013-05-29 16:11:41
这肯定是包涵体了,用尿素应该可以溶解,然后尝试复性,据你所说活性应该还是可以的!
3楼2013-05-29 15:35:48
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hraikeyan

金虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by cicelyzh at 2013-05-28 08:17:36
我觉得应该是包涵体。未诱导的菌超声能破,说明超声程序是没问题的。当然,不排除诱导后的菌体不如为诱导的好破。你的上清和沉淀跑电泳,并不能说明蛋白在上清和包涵体里面的比例。因为存在一个破损率的问题。未破的 ...

换宿主能和载体能解决吗?我现在换了一种国外产的rossetta,今天破碎后发现溶液变清亮了。很是激动,现在就等跑个电泳和测个活性看看。
nothing isimpossible
4楼2013-05-30 15:57:59
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kedaxiaoyu

木虫 (职业作家)

神虫浮云

【答案】应助回帖

★ ★
感谢参与,应助指数 +1
hraikeyan: 金币+2 2013-05-30 16:37:20
应该是包涵体,要想可溶性表达就重新构建吧。
5楼2013-05-30 16:28:20
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hraikeyan

金虫 (小有名气)

引用回帖:
5楼: Originally posted by kedaxiaoyu at 2013-05-30 16:28:20
应该是包涵体,要想可溶性表达就重新构建吧。

换宿主能和载体能解决吗?我现在换了一种国外产的rossetta,今天破碎后发现溶液变清亮了。很是激动,现在就等跑个电泳和测个活性看看。
nothing isimpossible
6楼2013-05-30 16:37:15
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whb21

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
应该是包涵体,建议楼主试试包涵体变性复性,换一个表达系统试试
7楼2013-05-30 16:42:23
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kedaxiaoyu

木虫 (职业作家)

神虫浮云

【答案】应助回帖

引用回帖:
6楼: Originally posted by hraikeyan at 2013-05-30 16:37:15
换宿主能和载体能解决吗?我现在换了一种国外产的rossetta,今天破碎后发现溶液变清亮了。很是激动,现在就等跑个电泳和测个活性看看。...

这个说不准,都有可能的,我们以前做也是包涵体,不想做包涵体变复性的话也是都重新构建。
8楼2013-05-31 07:56:41
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