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yanmeiliu

金虫 (小有名气)

[交流] 有哪位在做菊花的原生质体培养吗?或者其他植物的原生质体培养液可以,求经验。 已有3人参与

如题,我现在做菊花的原生质体培养实验,本实验室没有师兄师姐做过,本科不是学生物的,理论知识比较少,导师也不给指导,所以所有的方法都是自己在摸索,但是现在每次酶解出的原生质体活力都非常的低,所以在培养的时候根本看不到细胞分裂,想了很多改善的方法都没有结果,现在都研二下学期了,很着急,感觉也进行不下去了,唉,每天都实验折磨的都要抑郁了,老板也在变本加厉的折磨我。
哪位前辈做过,能否给些指导?不胜感激。
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starseacow

专家顾问 (职业作家)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
楼主得细化问题啊,你只是笼统的说想要指导,大家实验工作都很忙,很难有时间详细跟你讨论指导,你最好把问题一条条详细列出来,说明你是怎么做的,遇到什么问题。
植物生理群69993869,为避免广告,申请加入请提供木虫昵称,院校及专业信息
3楼2013-05-01 16:17:53
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yanmeiliu

金虫 (小有名气)

怎么没人回复啊?
2楼2013-05-01 12:08:29
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yanmeiliu

金虫 (小有名气)

引用回帖:
3楼: Originally posted by starseacow at 2013-05-01 16:17:53
楼主得细化问题啊,你只是笼统的说想要指导,大家实验工作都很忙,很难有时间详细跟你讨论指导,你最好把问题一条条详细列出来,说明你是怎么做的,遇到什么问题。

好的,谢谢您。
下面是我做的具体的步骤:
酶解液的配置:1.5%纤维素酶+0.5%果胶酶+1%MES+0.5mol/L甘露醇 溶于CPW溶液中,55℃ 10min 然后调节ph=5.6,抽滤灭菌备用。
1、取生长35天左右的组培苗,把叶片切成1mm宽左右,在黑暗条件下酶解。
2、每隔2、4、6h 取样观察酶解情况,并检测活力。
3.纯化的过程如下:酶解结束后先过滤,然后1000rmp 5 min ,吸取粗提物注入另一个25%蔗糖的离心管的顶部, 离心1000rmp 3 min,看文献说是原生质体在酶解液和蔗糖溶液间形成一条绿色的带状,感觉我离心出来的并不明显啊。不知道为什么??哪里出问题了?
最后是有一条绿色的带状,但是不明显。纯化出来的原生质体感觉和纯化前没区别。并且感觉浪费了很多原生质体。。。操作有问题吗?
还有,我选的材料用的是菊花的所有叶片,而不是顶芽上的叶片,是不是也有影响呢?
最关键的是测活力的时候感觉很少原生质体是活的,我是采用番红花红T染色法测定原生质体活力。染液配制:将番红花红T溶于含有甘露醇0.5mol /L的CPW溶液巾,配成浓度为0.1%的染
液备用。取染液和原生质体悬浮液各一滴混合,静置染色3?5min.,光学显微镜下分别计数被染成红色的原生质体数和原生质体的总数,观察10个视野,3次重复。

到底是哪里出问题了?
请高手帮忙分析一下。谢谢
4楼2013-05-01 20:58:39
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嘣哆—abc

铁杆木虫 (著名写手)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
初识楼主困境,小生倍有感触!依照楼主的实验目的,小生认为,是所选材料的部位上!虽然植物各个细胞均有一定的细胞全能性,只是这种潜能的大小上有(显著)差异!如生殖细胞>其它体细胞,分生组织(茎基部)细胞>其它组织细胞等等!呵呵~我想聪明的您应当找到答案了!(依照楼主发帖时间,这时菊科植物,尤其是菊花,在这个季节其脚芽特别多!您不妨选用它或根部分生组织!友情提醒,这部分组织材料若从土壤栽培的植物株取来的,要充分灭菌啊!)
一点儿愚见,见笑了!
恭候佳音~
愿你有个好心情!~

[ 发自手机版 http://muchong.com/3g ]
笃行,自信,奋进
5楼2013-05-06 21:33:57
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