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[交流]
【求助/交流】原生质体培养
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| 请问有没有做过原生质体培养的啊,能不能麻烦有经验的虫友分享一下原生质体的分离,纯化和培养等相关的知识啊?谢谢! |
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拟南芥原生质体的分离与转染 1)以4周龄未抽苔的、生长状态良好的野生型拟南芥,取5-7 片真叶,以刀片 将叶片中间部分切成0.5-1mm 的叶条,将叶条放入10ml 酶解液(20mM MES (PH5.7),1.5%(W/V)纤维素酶R-10,0.4%(W/V)离析酶R-10,0.4M 甘 露醇,20mM KCl,55℃温浴10 分钟灭活DNase,加入终浓度为10mM CaCl2, 0.1% BSA,2mM 巯基乙醇,最后以0.45um 的滤头过滤备用)。 2) 在真空干燥器中,黑暗条件下抽真空30 分钟,然后于黑暗条件下静置消化3 小时以上,轻摇后应看到条形的叶片几乎消失,此时可在显微镜下观察原生质体的释放情况。 3)以等体积的W5 溶液(2mM MES(PH5.7),154mM NaCl,125mM CaCl2, 5mM KCl)稀释酶解消化液,以75um 的尼龙膜过滤,将滤液于室温条件下100g 离心2 分钟,吸弃上清,以少量W5 溶液重悬原生质体。 4)在显微镜下以血细胞计数器计数原生质体细胞,最后以W5 溶液将原生质体溶液悬浮至浓度为2×105ml-1。放置于冰上冰浴30 分钟,然后尽可能用移液器移除W5 溶液。 5)以室温保存的MMG 溶液(4mM MES(PH5.7),0.4M 甘露醇,15mM MgCl2)将原生质体悬浮至浓度为2×105/ml。 6)于2ml 的EP 管中加入10ulDNA(浓度必须达到1ug/ul),加入100ul 原生质 体细胞(2×104ml-1),轻轻混匀,加入110ul 现配现用的PEG 溶液(40% PEG4000, 0.2M 甘露醇,0.1M CaCl2)并轻弹EP 管将其混匀,室温放置10 分钟,缓慢加 入440ul 的W5 溶液稀释反应液,轻轻颠倒混匀,100g 离心2 分钟,小心地吸弃上清。 7)加入1ml 的WI 溶液(4mM MES(PH5.7),0.4M 甘露醇,15mM MgCl2) 轻悬原生质体细胞,转移至六孔板中(预先以5%小牛血清处理5 秒钟),黑暗条件下室温培养12-16 小时。 8)100g 离心2 分钟,去除上清(留100-200ul 即可),以DAPI 染色细胞核,制片于荧光显微镜下观察。采用冷CCD 进行照相,原生质的形状在可见光下进行观察。 注:CaCl2是过滤灭菌,操作过程要小心,不可用力过猛,将移液器枪头切去一点。 |
5楼2011-03-27 20:43:13
2楼2011-03-26 22:14:42
3楼2011-03-27 17:40:43
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BY2细胞原生质体检测细胞定位 (1) By-2悬浮细胞的培养及保存 液体培养基:(1L) 800ml ddH2O 4.3g MS salt 200mg KH2PO4 30g Sucrose 以KOH调节 pH至5.8,定容至1L,113度,30分钟灭菌。 使用前加入 100mg Inositol(肌醇) 1mg Thiamin(VB1)硫胺 2mg Glycine(氨基乙酸) 以上三种一般配置成1000乘的贮存液,过滤后灭菌保存于-20度。 0.6mg 2-4-D(以无水乙醇配置10mg/ml,每100ml BY2液体培养基加入6ul)。加入以上物质后的BY2液体培养基放4度保存,不加上述物质可以放于常温。 注:以上为液体培养基,固体培养基则加入1%的琼脂。 培养的悬浮细胞,以1:20-1:25转接至液体培养基中,135rpm,26度暗培养,4-7天转接一次,长期不用则在固体培养基中,26度暗培养,倒置平板,一个月转接一次,使用前在液体培养基中活化2-3天。 (2) By2原生质体的制备 酶液(10ml) 2% Cellulase R-10(0.2g) 0.2% Macerozyme R-10(0.02g) 0.2% BSA(0.02g) 0.36ul/ml β-mercaptoethanol(3.6ul) 5mM MES(pH5.8) 0.4M Mannitol(5ml体积的0.8M的Mannitol) 1mM CaCl2(100ul体积的0.1M的CaCl2) 1)先于带刻度的15ml的试管中,称量固体,于超净台加入MES,mannitol,CaCl2,加ddH2O定容至10ml,摇匀,在于通风橱加入β-mercaptoethanol。 2)悬浮的细胞转接后3-4天,加入于50ml离心管中,1000rpm离心2分钟,小心地吸弃上清,以漂洗液(0.4M的Mannitol,5mM的MES(pH5.8))小心地漂洗一次,即颠倒混匀离心即可,万勿剧烈震荡,600-800rpm离心2分钟,吸弃上清,加入裂解酶液,轻轻摇匀,转移至干净的小烧杯中。小烧杯以封口膜封住,再以黑塑料袋包住避光,于摇床上40rpm消化3-4小时。 3)通过显微镜观察消化的程度,可以后酶解液以40um的Nylon mesh过滤,即用一漏斗与Nylon mesh过滤至10ml的管子中,800rpm离心3分钟。 4)将原生质体以漂洗液(0.4M的Mannitol,5mM的MES(pH5.8))洗1-2遍,再以电转液(0.4M的Mannitol,5mM的MES(pH5.8)),70mM的KCl)洗1-2次,离心速度都为700-800rpm,时间约为3分钟。加溶液时小心地加入,不要用力过猛。最后悬浮于0.5ml的电转液中,通过血细胞计数器在显微镜下估测浓度,通过加电转液稀释至浓度为2×106个细胞/ml,放置冰上保存备用。 5)清洗2mm的电转杯,自来水洗两遍,ddH2O洗两遍,倒置于吸水纸上,在空的EP管上标号,每管加入400ul原生质体细胞、2ul鲑鱼精DNA、10-20ug质粒(注:质粒必须大提,然后浓缩至1ug/1ul以上),小心地混匀转入2mm的电击杯中(电击杯预先冰浴)。 6)擦净电击杯的水,进行电击,参数如下:电压:150LV,电阻:50Ω,电容:900uF(电击的输出参数约为140V,14ms;细胞的存活率为40%,转化效率约为50%)。 7)电击结束后,向电击杯小心地加入1ml的电转液,轻轻地吹打,将细胞吹打出来,可见部分死细胞,转移至EP管中,冰浴30分钟,4度,900rpm离心2分钟,收集细胞。 8)于六孔板加入5%的小牛血清,请摇晃几秒进行封闭,倒出于每孔加入2ml的原生质体培养液(可以含适当的抗生素,抑制细菌)。 9)上接第7步,吸弃上清后,加入1ml的原生质体培养液,用移液器轻轻吹匀,转移至六孔板中,摇匀,盖上盖子并标记好顺序,用报纸包住放于26度静置培养(GFP为16小时,Gus assay则为24小时)。 10)16度静置暗培养后,转移至EP管中,1000rpm离心2分钟,吸弃上清,留100ul左右,轻轻摇匀,可于显微镜下观察。 注:可以用线粒体燃料,DAPI(以ddH2O溶解成Stock solution(1-5mg/ml),保存于-20度,用时1:1000稀释即可)等染细胞,30分钟后以原生体培养液洗1次即可。 原生质体培养液(浓度关系):使用时加入MES 0.5× MS salt 液体培养基 0.4M Mannitol 3% Sucrose 5mM MES(pH5.8) |
4楼2011-03-27 20:42:41
6楼2011-03-29 08:34:33
8楼2011-07-12 09:46:59
9楼2011-09-15 17:08:23
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huang1030(金币+1):谢谢参与
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10楼2011-12-20 13:34:58
12楼2012-05-02 18:24:00
13楼2012-05-04 11:35:56
14楼2012-09-20 17:03:16
15楼2012-09-20 19:58:21
16楼2013-04-26 10:32:48
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2011-03-29 10:10
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liuxq198211楼
2012-02-20 11:20
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