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Nhe I和Hind III 双酶切pcDNA3.1(+)和目的片段2300bp,却连不上,求各位帮忙啊
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| 我用Nhe I和Hind III 双酶切pcDNA3.1(+)和目的片段2300bp,胶回收连接后挑菌提质粒跑电泳发现比原来空载的质粒还要小,而且单酶切后大小差不多,郁闷了很长时间,希望大家帮帮忙啊!!!!还有就是,谁有pcDNA3.1(+)的酶切位点图谱,可否发一下,急求啊!!!谢谢谢!!! |
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8楼2013-03-12 11:17:56
酶切专家
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【答案】应助回帖
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小丹木木: 金币+2, 鼓励应助 2013-03-03 21:36:04
yiyijiayou21: 金币+5, ★有帮助 2013-03-10 15:30:50
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yiyijiayou21: 金币+5, ★有帮助 2013-03-10 15:30:50
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酶切图谱http://tools.invitrogen.com/content/sfs/vectors/pcdna3.1-.pdf 从你的描述来看,可能是你的载体和外源片段酶切不完全(尤其是载体酶切不完全),导致大量的载体自连,所以都是空载体。 你用的这两个酶中,NheI所需的酶量比较多(因为各个酶的单位定义是不一样的)。我了保证酶切完全,我建议你用double digestion designer(进行双酶切设计,该软件可以精确计算酶切时所需要的酶量,保证完全酶切。我用此软件帮你算了一下,如果你酶切2ug pcDNA3.1,NdeI(NEB)需要35U,HindIII(NEB)只需要6U.如果你按照所谓的经验加酶量,则NheI肯定不够,导致NheI位点酶切不完全,最终导致载体自连。类似的,你可以用此软件计算完全酶切外源片段的酶量。祝好运。这个软件的链接如下:http://www.bioinfomatics.cn/enzyme/showresult.php,可以免费试用。 |
2楼2013-03-03 20:03:21

3楼2013-03-10 15:25:30
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【答案】应助回帖
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gyesang: 金币+2, 鼓励应助 2013-03-13 20:01:26
gyesang: 金币+2, 鼓励应助 2013-03-13 20:01:26
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首先,你需要明确:制备的质粒一般是三种状态的混合物,超螺旋DNA,线性DNA,环状但非超螺旋DNA。电泳时,超螺旋DNA电泳比较快,线性DNA位于中间(对照DNAmarker,其电泳位置应该与其理论大小一致),环状但非超螺旋DNA电泳最慢。 当你用质粒提取试剂盒制备质粒时(按照标准方法),电泳检测时,质粒应该主要是超螺旋DNA条带,在线性DNA位置为出现一条较弱的带,偶尔会出现环状但非超螺旋DNA。这就表明,制备的高质量的质粒DNA在电泳时,其主要条带位置应该在其理论分子量大小的前面(即看起来比理论分子量小)。但如果你用已知的一个酶进行单切后,再电泳时,就发现其电泳位置应该与其理论分子量一致(即线性DNA的位置)。 根据此特点,可以用酶切前后的电泳带型的变化来判断你的同一个DNA样品的单酶切是否完全。 具体做法是: 设计一组酶切实验:A:不酶切的DNA对照;B:酶1单酶切样品,C:酶2单酶切样品 酶切1-2小时后,同时进行电泳分析,根据电泳时的带型,就可以知道酶1和酶2是否酶切完全。酶切完全的样品其主要带的位置在线性DNA的位置,在超螺旋DNA的位置看不见或很淡。否则,如果在超螺旋DNA的位置出现很明显的条带,表明酶切不完全。酶切不完全的原因有以下几种可能:1;质粒的质量不是很好,存在一些变性的DNA,无法被酶切开,2.可能是你的酶保存不当,酶已经失活。3.你加的酶量不够,导致酶切不完全。你需要针对这些可能,再逐步排除。 希望对你有帮助 |
4楼2013-03-10 20:05:23













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