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渗透冲击法 裂解诱导后的E.coli BL21(DE3),提纯HIS-tag蛋白,求指导
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nmgdwg
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渗透冲击法 裂解诱导后的E.coli BL21(DE3),提纯HIS-tag蛋白,求指导
最近在做220KD His-tag蛋白,最近试了下渗透冲击法提蛋白,用高渗40%(W/V)蔗糖处理后,再进行低渗处理,离心,菌体已经烂成一滩泥了!用30%(W/V)硫酸铵盐析后,没获得多少蛋白。第一次做,效果很不理想,求用过渗透冲击法的高手指导。十分感谢!!!
[
Last edited by nmgdwg on 2011-7-5 at 14:41
]
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2011-07-05 14:39:55
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nmgdwg(金币+5): 2011-07-08 13:16:10
lstt09nk(金币+2): 鼓励交流 2011-07-13 19:32:51
引用回帖:
Originally posted by
nmgdwg
at 2011-07-06 10:20:39:
它是二聚体,单个亚基110KD 也很难?
110KD对于BL21而言,是可以表达的,但是表达量不会大,可能会有小部分表达在上清,但大部分可能是以不溶的包涵体形式存在,这个不一定,也要看你蛋白本身的性质,不知道楼主有没有拿序列去分析一下蛋白的亲疏水区域,如果亲水区域高的话,表达上清会稍稍容易一点。
楼主的蛋白是要拿来做什么的,包涵体复性的方法不知道能不能用
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2011-07-06 11:19:18
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lstt09nk(金币+3): 感谢参与 2011-07-13 19:32:36
1、没获得多少蛋白的原因,恐怕不是因为你的渗透冲击法,而是本身就没表达出多少可溶状态(也就是说上清表达)的蛋白。
2、因为220KD有点超过大肠杆菌的表达能力了。即使有表达,大多也会以包涵体的形式存在。而以包涵体存在的蛋白在离心的时候已经和破碎的菌体一起存在在沉淀里了。
做这个蛋白,难度在于表达,而不是怎么裂解纯化。
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2011-07-05 21:35:18
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zsy1106
at 2011-07-05 21:35:18:
1、没获得多少蛋白的原因,恐怕不是因为你的渗透冲击法,而是本身就没表达出多少可溶状态(也就是说上清表达)的蛋白。
2、因为220KD有点超过大肠杆菌的表达能力了。即使有表达,大多也会以包涵体的形式存在。而 ...
它是二聚体,单个亚基110KD 也很难?
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2011-07-06 10:20:39
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zsy1106
at 2011-07-06 11:19:18:
110KD对于BL21而言,是可以表达的,但是表达量不会大,可能会有小部分表达在上清,但大部分可能是以不溶的包涵体形式存在,这个不一定,也要看你蛋白本身的性质,不知道楼主有没有拿序列去分析一下蛋白的亲疏水 ...
都没做过,之前师姐在国外完成了这个试验,也不知道是她做的,还是老外做的,她带回来一个实验方案,老板让我先重复他的工作.....很头大
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2011-07-08 13:18:34
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