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happy-j

银虫 (小有名气)

[求助] WB结果不理想,呼唤帮助

WESTERN BLOT新手,重复了好几次都快郁闷了。。。
第一张图是β-actin的结果,第一次的时候结果挺好的,可是不知道为什么最近几次都是这样,出来的条带不清楚而且很细。。。而且还有说不清的杂点,呼唤高手指点~~~
具体实验操作:
      从Hep G2细胞中用碧云天的中性裂解液提的蛋白,用的abmart的一抗,稀释比例1:4000(试用装,说明书中说可用1:5000做),二抗稀释比例1:4000。
    上样蛋白100ug/20ul
     分离胶浓度12%,电泳条件:100V,150min; 转膜条件:250mA, 70min; 5%脱脂奶粉封闭1h, 一抗4度孵育过夜


第二张图是硫酸转移酶蛋白的结果,蛋白源及提取方法、电泳、转膜条件如上。抗体应该没有问题,稀释比例按照说明进行。这个为什么条带之间界限不清楚,而且为什么在条带交际处显色较深?




[ Last edited by happy-j on 2011-5-17 at 23:59 ]
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314300420

捐助贵宾 (著名写手)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★
lstt09nk(金币+6): 感谢参与,欢迎常来 2011-05-19 13:37:07
happy-j(金币+1): 第一次发帖求助,非常感谢提供解决意见。 2011-05-19 20:29:08
引用回帖:
Originally posted by happy-j at 2011-05-17 23:58:07:
WESTERN BLOT新手,重复了好几次都快郁闷了。。。
第一张图是β-actin的结果,第一次的时候结果挺好的,可是不知道为什么最近几次都是这样,出来的条带不清楚而且很细。。。而且还有说不清的杂点,呼唤高手指点~ ...

内参的抗体是不是回收使用了?现在天气比较热,抗体容易失活效价变低,而且会产生杂点和高背景,建议不要回收。根据你内参的结果分析,主要原因就是荧光强度低,可提高抗体浓度,另外使用的发光液的敏感性很重要,好的ECL发光液可以节省抗体,降低背景值,Millipore的效果很不错(货号WBKLS0500)。
第二张图的结果,分析认为是上样量过大,100ug/泳道,已经过载,超过了凝胶的分辨率,相邻孔的蛋白已经连在一起了,效果和没有梳子是一样的。你可以看看100ug的上样量,考马斯亮蓝染色的结果是什么样的,再对比下20ug的上样量是什么效果。
3楼2011-05-19 09:41:41
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查看全部 21 个回答

happy-j

银虫 (小有名气)

木有人指点?呜呜,急求。。。
2楼2011-05-18 21:37:46
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天涯萧客

金虫 (正式写手)

放羊大叔

【答案】应助回帖

★ ★
lstt09nk(金币+2): 鼓励 2011-05-19 13:37:32
比较脏,建议检测封闭液(可以先用BSA试试看会不会这样),或者把5%脱脂奶粉过滤。还有一个就像楼上说的一样,抗体问题。第二张图除了上述问题还有就是上样量太大,100ug,我们一样使30-40ug,除非比较难检的蛋白
100年后地球照样转
4楼2011-05-19 11:33:40
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happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-19 09:41:41:
内参的抗体是不是回收使用了?现在天气比较热,抗体容易失活效价变低,而且会产生杂点和高背景,建议不要回收。根据你内参的结果分析,主要原因就是荧光强度低,可提高抗体浓度,另外使用的发光液的敏感性很重 ...

内参抗体没有回收使用,是新的抗体。用的发光液就是millipore,~~~~(>_<~~~~
之前做过上样量50ug/20ul的,但是结果跟上面的图差不多。。。然后有人建议可以调高上样量试试,所以...
再试一次,看会不会改善吧。
谢谢^_^
5楼2011-05-19 20:39:40
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