24小时热门版块排行榜    

查看: 4122  |  回复: 20
本帖产生 1 个 BioEPI ,点击这里进行查看
当前只显示满足指定条件的回帖,点击这里查看本话题的所有回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

[求助] WB结果不理想,呼唤帮助

WESTERN BLOT新手,重复了好几次都快郁闷了。。。
第一张图是β-actin的结果,第一次的时候结果挺好的,可是不知道为什么最近几次都是这样,出来的条带不清楚而且很细。。。而且还有说不清的杂点,呼唤高手指点~~~
具体实验操作:
      从Hep G2细胞中用碧云天的中性裂解液提的蛋白,用的abmart的一抗,稀释比例1:4000(试用装,说明书中说可用1:5000做),二抗稀释比例1:4000。
    上样蛋白100ug/20ul
     分离胶浓度12%,电泳条件:100V,150min; 转膜条件:250mA, 70min; 5%脱脂奶粉封闭1h, 一抗4度孵育过夜


第二张图是硫酸转移酶蛋白的结果,蛋白源及提取方法、电泳、转膜条件如上。抗体应该没有问题,稀释比例按照说明进行。这个为什么条带之间界限不清楚,而且为什么在条带交际处显色较深?




[ Last edited by happy-j on 2011-5-17 at 23:59 ]
回复此楼
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

木有人指点?呜呜,急求。。。
2楼2011-05-18 21:37:46
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-19 09:41:41:
内参的抗体是不是回收使用了?现在天气比较热,抗体容易失活效价变低,而且会产生杂点和高背景,建议不要回收。根据你内参的结果分析,主要原因就是荧光强度低,可提高抗体浓度,另外使用的发光液的敏感性很重 ...

内参抗体没有回收使用,是新的抗体。用的发光液就是millipore,~~~~(>_<~~~~
之前做过上样量50ug/20ul的,但是结果跟上面的图差不多。。。然后有人建议可以调高上样量试试,所以...
再试一次,看会不会改善吧。
谢谢^_^
5楼2011-05-19 20:39:40
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 天涯萧客 at 2011-05-19 11:33:40:
比较脏,建议检测封闭液(可以先用BSA试试看会不会这样),或者把5%脱脂奶粉过滤。还有一个就像楼上说的一样,抗体问题。第二张图除了上述问题还有就是上样量太大,100ug,我们一样使30-40ug,除非比较难检的蛋白

嗯,好的。谢谢!
一步步做我的这个实验问题排查,期待尽快得到好结果
6楼2011-05-19 20:40:45
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-19 21:47:44:
先将SDS-PAGE跑的好看点(考马斯亮蓝染色),转膜后用立春红染色(可以将结果扫描存着),观察和考染的效果是否相当,最好把图贴上来会更直观些。
另外听楼主的意思,是没有做过预实验吧?抗体说明书给的建议稀释 ...

非常感谢您提供的实例参照,偶像~~

还有几个问题想问一下:

1、制备蛋白样品的时候,为什么要用RIPA来稀释呢?这个如果用ddH2Ol来调节蛋白浓度会有多大影响?

2、你用于蛋白抽提的RIPA是哪个公司的?配方是什么样的呢?我一直怀疑我的蛋白有问题,但是同实验的人用同样的RIPA做出来的结果比我的结果要好,所以不敢贸然更换RIPA,我用的是碧云天的

3、摸索一抗稀释倍数的时候一般如何设定?我之前有做过预实验,分别将稀释倍数设定为1:1000和1:1500,结果没有太大差别。说明书上给的建议是1:1000-1:2000.
另外,二抗的稀释倍数也需要摸索嘛?

再次感谢~~~

期待回复~~^_^
8楼2011-05-20 23:36:44
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-21 09:14:42:
1. 调整蛋白浓度的时候一般选择所用的裂解液来调整,一来可以保证体系里面的离子强度保持不变,二来因为裂解液里面含有诸如EDTA等可以抑制蛋白酶活性,可以尽量避免蛋白被降解,如果没有裂解液也可以用PBS稀释,至 ...

再次,非常非常感谢!
10楼2011-05-21 10:05:50
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-21 09:14:42:
1. 调整蛋白浓度的时候一般选择所用的裂解液来调整,一来可以保证体系里面的离子强度保持不变,二来因为裂解液里面含有诸如EDTA等可以抑制蛋白酶活性,可以尽量避免蛋白被降解,如果没有裂解液也可以用PBS稀释,至 ...

不好意思,想再问你个问题。

请问,用BSA跟用脱脂牛奶封闭有很大的差别嘛?我做了个对比,但是不知道是我实验中其他环节出差别了呢还是确实是两个封闭液的差别,结果一个化学发光后效果很好,而另一个却没有任何条带,但是丽春红染色的时候两张膜上都有蛋白。求取经验值O(∩_∩)O~

您的分离胶以及浓缩胶的是提前一天配制还是当天配制当天跑胶?提前一天配胶跟当天配胶当天跑胶会有很大影响吗?如果提前一天制胶那如何保存?

另外,你能帮我看一下二抗点膜测试结果嘛,选择哪个点比较合适呢?

11楼2011-05-23 14:49:30
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖

happy-j

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by 314300420 at 2011-05-23 16:18:04:
封闭效果绝大多数情况下BSA会好些,封闭充分,背景相对干净,相对来说还可以起到提高检测敏灵敏度的效果。对于检测一些磷酸化和糖基化蛋白时则通常只选择BSA而不选择奶粉,否则会产生高背景。
你的是奶粉封闭 ...

嗯,3Q~

好幸运,碰上了大侠O(∩_∩)O~
13楼2011-05-23 16:38:23
已阅   回复此楼   关注TA 给TA发消息 送TA红花 TA的回帖
相关版块跳转 我要订阅楼主 happy-j 的主题更新
信息提示
请填处理意见