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[交流]
【求助】蛋白提取
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| 请问下酸会影响提细菌蛋白吗?因为我需要将培养基中的难溶磷用酸溶掉才能得到菌体。谢谢。另外,提出的蛋白可以直接双向电泳吗? |
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★ ★
amisking(金币+2, EPI+1): 鼓励发帖交流。 2011-04-12 21:45:46
tangchaoxi(金币+3): 2011-04-13 08:45:56
amisking(金币+2, EPI+1): 鼓励发帖交流。 2011-04-12 21:45:46
tangchaoxi(金币+3): 2011-04-13 08:45:56
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后面看到,你的蛋白是用来做双向电泳的,而不是测活的。 因此,低pH的酸应该影响不到蛋白吧。 关键是你加酸量有多少? 难道要加100 mM的HCl处理 一小时? 那菌体估计都要破掉了。 你的菌体的获得很麻烦吗?难道是生长在磷酸钙之类的上面? 菌体提取的蛋白,要分成几类: 1)最简单的,可溶性上清中的蛋白: 去除盐类后,可以做双向电泳的样品。 2)膜蛋白,因为可溶性差,需要特殊的试剂处理,增加其在第一维电泳时的可溶性。具体的你得去查论文,这里只是提示一下。 另外,实际上,对于全细胞蛋白,双向电泳许多时候会过滤掉很多蛋白点的! 选择双向电泳Loading buffer 组分很关键。 |
2楼2011-04-12 17:41:10
3楼2011-04-13 08:50:37
4楼2011-04-13 09:00:21
tangchaoxi(金币+3): 2011-04-13 20:28:37
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绝对不可以。 浓盐酸会溶解细胞,1min 内就溶解了,然后大部分蛋白被酸沉。 酸,即使50 mM HCl,也会沉淀许多细胞蛋白。 我觉得你没必要非要这时候去除磷酸钙。 你可以在破碎菌体时离心去除的。 你如果是做菌体上清蛋白,而发酵液没有其他固体培养基的话, 建议你在pH8-10之间,直接超声破碎 发酵液沉淀(就是磷酸钙+菌体), 然后在4℃ 10000 rpm 离心10-20min, 这样,磷酸钙都沉淀了, 取上清即可。 如果想溶解更多的膜蛋白(或全菌体蛋白),需要用2D电泳的Loading Buffer 加入发酵液沉淀,来直接超声破碎沉淀,然后在4℃ 10000 rpm 离心10-20min,取上清。 如果想鉴定破碎液的蛋白, 就用SDS -PAGE电泳 loading buffer, 加入样品后沸水浴3-5min,离心,上样即可。 你看如何? [ Last edited by HarveyWang on 2011-4-13 at 18:40 ] |
5楼2011-04-13 18:34:09
6楼2011-04-13 20:47:54
tangchaoxi(金币+2): 2011-05-25 09:50:40
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1)既然是找菌体差异蛋白,那应该是全菌体蛋白。 怎么是用硫酸铵来沉淀菌体蛋白呢? 全菌体蛋白的提取就是用 2D电泳的 Loading buffer (里面主要的是尿素或硫脲,还有些非离子表面活性剂等等。。这要看你的优化条件)。 你分离出细胞就可以了。不需要硫酸铵沉淀蛋白,再说硫酸铵沉淀蛋白不可能时完全的,对于你找群体差异蛋白造成很大干扰。 按照你的情况,发酵液离心得到磷酸钙和菌体沉淀,然后用缓冲液重悬,再离心沉淀,然后就加蛋白提取液 。(2D电泳膜蛋白提取 好像也有试剂盒的,比较贵些。。。你也可以选择最近的文献中 全细胞提取 尤其是膜蛋白提取的配方) 2)菌体产酸 对全菌体蛋白提取过程不会有什么影响。 因为你要发酵液离心(1 mL 发酵液足够了),然后用4℃ 0.9% NaCl 洗涤一下,再离心,直接加 全菌体蛋白提取液。 离心机最好选用高速的。例如 10000 rpm--30 sec 就基本可以离心下菌体细胞了。这个洗涤过程操作也就1-2min时间。 |
7楼2011-04-14 07:34:12













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