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daifeng

银虫 (小有名气)

[交流] 以NADH为底物的酶的酶活测定 已有7人参与

NADH在340nm处有吸光值,我现在利用的酶能氧化NADH成NAD+,所以在测定该酶的酶活时,是利用其在340nm处吸光值的减小来算的,另外我用的是752型分光光度计,在测定中有几个疑问,想请教一下各位虫友:
1、吸光值降低到负值,对酶活的测定影响大吗?
2、在测定中每次吸光值都是降到-0.097,而且在加入一个物质时,酶活降低了将近50%,吸光值还是降到-0.097,这是什么原因呢?
3、在后面的实验中,又发现的是:空白对照后,在放入样品前,发现其吸光值也是-0.097,那么对“2、”能给出的是什么结论呢?
我在这先谢过各位虫友啦^_^
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daifeng

银虫 (小有名气)

NADH为底物的酶活测定

引用回帖:
Originally posted by qianggene at 2009-11-09 17:08:06:
我也做这方面的实验,只不过是NADPH,我的难题是:反应时间该多久比较合适,才能比较精确的测出酶活?

NOX酶活测定的反应体系:反应液总体积 3.2mL,含有0.1M的磷酸钾缓冲浓液(pH7.0)、1mM的DTT、加入20mM NADH 25μl后于30℃保温10min,再加入200μl酶液,以固定的频率快速振荡之后,通过紫外分光光度计于和340nm下连续跟踪其吸光度的变化,连续测1 min,每隔6 s读取数据。活力定义为:在上述条件下,每分钟氧化1 μmol NADH所需的酶量为1个单位。其酶活力单位的计算公式如下:
酶活力单位(U/mL)=( Vt* ⊿A/⊿t) /(e*L*  Vs )         (式2-1)
Vt :反应液总体积,本实验为3mL;
Vs :样品体积,本实验为0.20mL;
e : 摩尔吸光系数,NADH在340 nm处的毫摩尔消光系数为6.22;
L :比色杯光径 (cm),本实验中采用光径1.0cm比色杯;
⊿A/⊿t:每分钟吸光度变化值,实际根据初速度法取酶促反应第一分钟的⊿A,先后测3个平行样取平均值;
比活力 (U/mg):酶活 (U/mL) 与蛋白浓度 (mg/mL) 的比值。
由上所述,NOX活力单位(U/mL)=2.6×(⊿A/min)。
6楼2010-05-18 21:52:54
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红多多

木虫 (正式写手)

版筑饭牛的日子

★ ★ ★ ★ ★
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amisking(金币+4,VIP+0): 11-9 17:41
吸光是正值说明你的样品将光源的光吸收了一部分,要是为负值……是不是说你的样品有自发关现象?所以我觉得你是不是应该用你反应完了的样品,也就是NAD+(-0.097)的这个来调零,这样你在测定的值就是正值了。

另外你的问题1  可能会有影响,在负值时线性关系可能会不好。 问题2 酶活降低,最终生成物浓度不变,这个说明你的酶量降低了一半,或者是有竞争性抑制剂在作用。问题3 这说明你的空白样有吸收,用NAD+(-0.097)调零试试吧,这个对2好像没什么影响吧。

个人观点,不一定正确,等待高人指点
可以用QQ找我……
2楼2009-11-09 11:20:11
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小小豆豆

金虫 (小有名气)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
有一点没有明白,你是用终点法还是速率法测定酶活单位,如果用终点法,应该影响不大,但如果用速率法的话,肯定不行。
3楼2009-11-09 14:12:56
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qianggene

铜虫 (小有名气)


小木虫(金币+0.5):给个红包,谢谢回帖交流
我也做这方面的实验,只不过是NADPH,我的难题是:反应时间该多久比较合适,才能比较精确的测出酶活?
4楼2009-11-09 17:08:06
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