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weizhi111

至尊木虫 (正式写手)

[求助] 怎样提高融合蛋白表达量 已有6人参与

在BL21菌株中诱导表达蛋白,用的是GST标签,做了几次发现上清里面诱导的蛋白很少,挂柱洗脱后几乎看不见条带。沉淀(包涵体)蛋白还比较多。诱导条件试过IPTG 0.5mM 16度过夜,但IPTG 改成0.3mM 16度过夜后总体诱导表达量就减少了,上清沉淀都少,该怎么解决呢?最后蛋白是要用来测酶活的,所以诱导纯化过程不能破坏酶活。请有经验者帮助!
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ksws0465326

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

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weizhi111: 金币+3, ★★★很有帮助 2015-08-04 14:44:17
weizhi111: 金币+2, ★★★很有帮助 2015-08-05 07:57:09
像楼上说的,不知道楼主摇菌转速多少,太快也不好,我们实验室常用170rpm,我也做过几次BL21的GST蛋白提取,加的时0.4mM的IPTG,30度3小时,回收量还不错,还有,根据培养基的组成不同,也会很大程度的影响蛋白产生量,比如,我回收TBP的时候,起初,用的培养基是Tryptone or polypeptone 5g,NaCl  1.25 g,NH4Cl  0.5g,KH2PO4 1.5g,Na2HPO412H2O 4.01g,up to 500ml, 取50ml培养回收,这时效率,上清大概是沉淀的50%(上清含量少),而后,我将培养基改成NaCl 0.5 g,NH4Cl  1g,KH2PO4  3g,Na2HPO412H2O  15g,up to 500ml;用时另外加入:1M MgSO4 1ml,2M Glucose  5.6ml,1% Vitamin B1(thiamine)  1ml,1M CaCl2 0.1ml。取50ml培养回收,反应条件30度2-4小时 OD600:0.4~0.8后加入IPTG,之后16度 24小时,回收TBP效率提高一倍。当然这也只是我做的个例,不能保证适用于所有的蛋白,仅供楼主参考,可以考虑改变下培养基成分,祝楼主早日解决问题。
7楼2015-08-03 20:13:41
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ksws0465326

金虫 (小有名气)

引用回帖:
18楼: Originally posted by weizhi111 at 2015-08-05 07:57:51
请问你破菌时超声一般用什么条件?...

我做的时候,是这样,50ml培养基,菌摇起来OD600 在0.4-0.8后先取出4ml作为Pre-IPTG control,然后剩余的加入IPTG,继续培养,然后回收Past-IPTG sample,离心去上清,加入buffer进行破碎,control加300微 buffer,sample加600微,超声破碎条件是冰上操作,control 5sec/回,sample 10sec/回,间隔10-20sec,8回破碎,然后回收。我回收TBP也是30KD左右,效率还行,就是不知道是否适用于楼主的蛋白了
20楼2015-08-05 08:29:55
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