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蓝默儿

金虫 (小有名气)

[求助] 两种单抗夹心ELISA方法的建立

用一株单抗进行包被,用另一株酶标单抗进行检测,抗原为纯化好的原核表达蛋白,同时设阴性对照和空白对照,结果阴性对照和空白值很高可达到1.5。为什么会出现这种情况,难道酶标单抗与另一株单抗反应了,好郁闷,求帮助。。。
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寂静之林

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

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蓝默儿: 金币+4 2014-06-05 09:10:11
阴性对照和空白值都很高,请问你的空白值是怎么设置的?只加显色液?还是第一步没加阴阳性对照,第二步加了酶标抗体?
可能的原因有:
1、你说的,酶标抗体和包被抗体有反应;
2、包被抗体后,没有进行封闭,导致酶标抗体吸附在微孔板上;
3、包被抗体后,进行封闭,封闭液的某些组分可以跟酶标抗体反应;
4、加入酶标抗体反应后,清洗不干净,导致酶标抗体残留在微孔板上。
最后,还是具体介绍一下你的实验步骤,实验条件,这样大家才好给你分析是哪里出问题了!

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2楼2014-06-04 23:57:53
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蓝默儿

金虫 (小有名气)

送红花一朵
引用回帖:
2楼: Originally posted by 寂静之林 at 2014-06-04 23:57:53
阴性对照和空白值都很高,请问你的空白值是怎么设置的?只加显色液?还是第一步没加阴阳性对照,第二步加了酶标抗体?
可能的原因有:
1、你说的,酶标抗体和包被抗体有反应;
2、包被抗体后,没有进行封闭,导致 ...

真心谢谢您的帮助,我的具体步骤是:
1.包被:将三种单抗混合,1:1000,1:2000,1:4000......1:128000稀释,做三个平行,4°过夜。
2.第二天洗涤4次,每次3min,拍干。5%脱脂乳封闭,37°,2h。
3.洗涤4次,每次3min,拍干。加抗原(为纯化好的原核表达蛋白)稀释浓度为2微克/ml,同时设阴性对照(胎牛血清1:100稀释),空白对照(PBS溶液)。37°,1h。
4.洗涤4次,每次3min,拍干。加酶标抗体(1:1000稀释),37°,1h。
5.洗涤4次,每次3min,拍干。加TMB显色,每孔100微升。37°,10min。
6.2M硫酸终止,
7.OD450读数。
微笑,自信,加油
3楼2014-06-05 09:09:47
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寂静之林

银虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

看过你的整个实验安排,很可能是包被抗体和酶标抗体有反应。可以做一个小实验验证一下,比如拿块空白的微孔板,用同样的封闭液封闭一下,再跟包被有抗体的板一起对比,不需要加样品,直接加酶标抗体,预留几个孔不加酶标抗体的,然后孵育,孵育完了洗板加显色液。
另外,还有可能是你的酶标抗体浓度太高,1:1000改成1:20000或1:50000试一下吧
4楼2014-06-05 09:58:50
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