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15944682692

新虫 (初入文坛)

[求助] 眼含热泪求助:pcDNA3.1 插入4000bp 质粒构建,大虾请留步 已有2人参与

各位大虾,兄弟最近忙于质粒构建,意图将一段长约4000+ bp的片段,通过Not1和EcoR1两个酶切位点连接到pcDNA3.1+载体上。情况如下:
1. 通过inversion AccuPrimeTaq DNA Polymerase High Fidelity酶扩增,并纯化回收目的片段(引物加酶切位点,保护性碱基,T7启动子);由于回收效率很高150ng/ul,下一步双酶切时,NEB双酶切50ul体系,加了7 μl的目的片段*5,22℃12h,再进行胶回收。
2. 载体pcDNA3.1也按照以上的体系进行双酶切,时间为12 h,这次没有去磷酸化,(之前有过,也没连上)。
3. 将酶切后的目的片段和载体进行电泳,结果显示大小与预期相符,亮度相近。
4. 连接时,NEB T4连接酶,目的片段:载体=5:1,10 μl体系。
5. 感受态为新买的天根的DH5α。
结果:
转化后,平板上均有数量不等的菌落产生,少时10个,多时50来个。摇菌扩增8 h,提取质粒,检测组无阳性结果,有的在1000 bp左右出现条带,有的在鱼对照未酶切pCDNA3.1质粒相同位置2500左右出现条带。实验三个月无进展。
请高手指点迷津。
如果有效果好的、适于长片段连接的方法,也请大家指教,多谢。
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shiyiyaya

金虫 (正式写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 15944682692 at 2014-02-25 09:10:01
非常感谢您的回复,我也尝试过连接T载体,试过很多次,但都没成功,是不是因为片段太大了连不上呢,T:1ul,片段:4ul,solutionI:5ul。16℃过夜,一般都是自连,没连上过,您还有什么好建议吗?...

如果是自连的情况多,可以考虑在连接之前进行脱磷处理。也可以尝试转化过程中的慢摇在28°左右进行,后续培养菌也在28°左右。
4楼2014-02-25 09:50:46
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shiyiyaya

金虫 (正式写手)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
1. 可考虑将PCR产物连接到T vector,这样减少你PCR的次数。日后摇菌可扩增,还可以看到酶切干净的条带,不必担心PCR产物酶切不完全。
2. 连接之前,载体少加一些,外源基因可多加,比例可10:1~15:1。体系可扩大到15ul左右。
3.可连接16° 8h左右或者室温连接3h。
4. 如果成功率不高,可挑12-24个菌提取质粒鉴定。

祝好!本人最近也遇到难题,慢慢攻克中。加油啊!
2楼2014-02-25 08:38:13
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15944682692

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
2楼: Originally posted by shiyiyaya at 2014-02-25 08:38:13
1. 可考虑将PCR产物连接到T vector,这样减少你PCR的次数。日后摇菌可扩增,还可以看到酶切干净的条带,不必担心PCR产物酶切不完全。
2. 连接之前,载体少加一些,外源基因可多加,比例可10:1~15:1。体系可扩大到1 ...

非常感谢您的回复,我也尝试过连接T载体,试过很多次,但都没成功,是不是因为片段太大了连不上呢,T:1ul,片段:4ul,solutionI:5ul。16℃过夜,一般都是自连,没连上过,您还有什么好建议吗?
3楼2014-02-25 09:10:01
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鬼羽帝魂

木虫 (著名写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 15944682692 at 2014-02-25 09:10:01
非常感谢您的回复,我也尝试过连接T载体,试过很多次,但都没成功,是不是因为片段太大了连不上呢,T:1ul,片段:4ul,solutionI:5ul。16℃过夜,一般都是自连,没连上过,您还有什么好建议吗?...

这步不加T4酶能连上吗
5楼2014-02-25 10:01:23
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