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shwkx1987

新虫 (小有名气)

应助: 1 (幼儿园)
金币: 650.2
帖子: 73
在线: 24.9小时
虫号: 858081

[交流] 就要被免疫荧光折磨疯了，大侠啊，求救啊！！！

从上学期开始做间接免疫荧光，染得是细胞角蛋白骨架。刚开始荧光太弱，摸索了好一阵子，这学期初终于能染好了。可从四月中开始，固定这一步出现了致命的问题，至今找不到好的解决办法。不知有没有有经验的同学可以指点一下啊
我之前一直用的是-20度遇冷的100%甲醇在-20度固定十分钟，效果还好。可现在固定五分钟细胞就都收缩甚至直接就脱片了，实在不知道为何啊。用4%甲醛、多聚甲醛固定细胞都不会收缩，但严重影响抗体的结合，荧光极弱。
现在是实验的关键阶段，出现这样的问题，就如晴天霹雳，这段时间快痛苦死了。求救啊！！！！

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1楼 2012-05-29 21:37:52

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zmeng

铁虫 (初入文坛)

BioEPI: 1
应助: 3 (幼儿园)
金币: 102.7
帖子: 42
在线: 18.2小时
虫号: 1224848

★
小木虫: 金币+0.5, 给个红包，谢谢回帖

“只是在封闭液和抗体稀释液中含有。是不是需要加一步透化处理呢或者抗原修复”
我觉得问题出现在这里，triton-x100是一种表面活性剂，你用来浮抗体应该是结合不好的。我的经验是4%多聚甲醛固定好了以后，0.5%的triton-x100或者NP-40通透30min,然后PBS洗3次，封闭，孵育抗体。或许会好一点
仅个人经验