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就要被免疫荧光折磨疯了,大侠啊,求救啊!!!
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shwkx1987
新虫
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虫号: 858081
[交流]
就要被免疫荧光折磨疯了,大侠啊,求救啊!!!
从上学期开始做间接免疫荧光,染得是细胞角蛋白骨架。刚开始荧光太弱,摸索了好一阵子,这学期初终于能染好了。可从四月中开始,固定这一步出现了致命的问题,至今找不到好的解决办法。不知有没有有经验的同学可以指点一下啊
我之前一直用的是-20度遇冷的100%甲醇在-20度固定十分钟,效果还好。可现在固定五分钟细胞就都收缩甚至直接就脱片了,实在不知道为何啊。用4%甲醛、多聚甲醛固定细胞都不会收缩,但严重影响抗体的结合,荧光极弱。
现在是实验的关键阶段,出现这样的问题,就如晴天霹雳,这段时间快痛苦死了。求救啊!!!!
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1楼
2012-05-29 21:37:52
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shwkx1987
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2楼
:
Originally posted by
肖颖2009
at 2012-05-30 11:12:07
是不是细胞状态不好啊,先把细胞状态调整好再说吧~
我也想到了,复苏了新的还是一样
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4楼
2012-05-30 12:13:53
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8楼
:
Originally posted by
yushenye
at 2012-05-30 16:28:29
“用4%甲醛、多聚甲醛固定细胞都不会收缩,但严重影响抗体的结合,荧光极弱。”
应该是你没有透化好吧
我在固定液中没加triton-x100,只是在封闭液和抗体稀释液中含有。是不是需要加一步透化处理呢或者抗原修复
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10楼
2012-05-30 17:59:23
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12楼
:
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小神-小神
at 2012-05-31 08:50:03
固定液中没加triton-x100?那么您的操作步骤是什么呢?
我是用4%多聚甲醛固定15-30min后,PBS洗3-4次(每次5min);
接下来用0.1%triton-x100透化15-30min,再用PBS洗3次。
再加含有BSA的PBS溶解一抗冰箱孵育过 ...
非常感谢您。我是用甲醛固定之后,直接封闭。在封闭液中含有0.2%的triton-x100。我再试试您说的。
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14楼
2012-05-31 16:47:00
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13楼
:
Originally posted by
小神-小神
at 2012-05-31 09:02:06
另外补充一点,如果目标蛋白不是细胞膜蛋白,那么都需要透化的。
我现在搞不懂,为什么现在用甲醇固定细胞就脱片了,之前一直都挺好的啊
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15楼
2012-05-31 16:48:06
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11楼
:
Originally posted by
yuanyisuo
at 2012-05-31 07:56:04
冷丙酮试试呢
我再试试。谢谢您!
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16楼
2012-05-31 16:49:04
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17楼
:
Originally posted by
zmeng
at 2012-06-06 17:36:02
“只是在封闭液和抗体稀释液中含有。是不是需要加一步透化处理呢或者抗原修复”
我觉得问题出现在这里,triton-x100是一种表面活性剂,你用来浮抗体应该是结合不好的。我的经验是4%多聚甲醛固定好了以后,0.5%的tr ...
我试过了,荧光还是弱
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18楼
2012-06-12 11:37:50
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