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【求助/交流】连接实验假阳性加多如何解决
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yuyan225
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[交流]
【求助/交流】连接实验假阳性加多如何解决
如题,我在连表达载体的时候载体与片段的摩尔比用了1:8,能长出好多菌落,但在进行菌落PCR的时候全部都是假阳性,我已经P了40多个菌落都是假阳性~~~忘各位虫友不吝赐教,谢谢!!
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1楼
2011-04-10 16:02:21
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空谷幽风
金虫
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yuyan225(金币
+1
):谢谢参与
西瓜(金币+3): 鼓励 2011-04-11 14:20:17
引用回帖:
Originally posted by
yuyan225
at 2011-04-10 16:02:21:
如题,我在连表达载体的时候载体与片段的摩尔比用了1:8,能长出好多菌落,但在进行菌落PCR的时候全部都是假阳性,我已经P了40多个菌落都是假阳性~~~忘各位虫友不吝赐教,谢谢!!
从你的叙述来看不是你的载体片段比例问题,而是载体出问题了,解决方法如下:
(1)载体如果是单酶切,割胶回收后做一步去磷酸化
(2)如果是双酶切,请分别做单酶切验证,看是不是酶质量有问题。或者是两个酶切位点比较近,导致一种酶无法正常切割
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6楼
2011-04-11 13:53:42
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zhaohq1209
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yuyan225(金币
+1
):谢谢参与
西瓜(金币+3): 去磷是好办法。夜深了,早点休息哦~ 2011-04-10 23:57:30
西瓜(金币+2, EPI+1): 鼓励,继续加油啊! 2011-04-12 10:47:41
引用回帖:
Originally posted by
yuyan225
at 2011-04-10 16:02:21:
如题,我在连表达载体的时候载体与片段的摩尔比用了1:8,能长出好多菌落,但在进行菌落PCR的时候全部都是假阳性,我已经P了40多个菌落都是假阳性~~~忘各位虫友不吝赐教,谢谢!!
遇见过这样的问题。
片段多,载体少,这样的比例没有问题,也可以1:10。
最常见的原因是载体酶切不完全,导致载体自连。通常有两种解决方法:
1、用碱性磷酸酶处理,消化掉5‘端磷酸基团,防止载体自连。但在lz现有的条件下可能会造成阳性率偏低。
2、个人认为最好的解决方法:增加载体酶切的时间。既然是做连接,那应该是保证片段方向的双酶切,不知lz用的什么酶切体系,酶切多长时间?可以尝试酶切时间增加到24小时。
祝lz顺利、好运!
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2楼
2011-04-10 23:49:46
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三磷酸腺苷
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yuyan225(金币
+1
):谢谢参与
西瓜(金币+3, EPI+1): 高手就是高手 2011-04-12 10:47:06
yuyan225(金币+3): 2011-04-12 15:34:30
载体酶切不完全,去磷酸化是无法解决的…………
酶切不完全的意思是,根本没切开,或者双切只切了其中一段
其实最好的解决方案是,买好一点的内切酶(NEB、Fermentas),切够时间(按照酶活定义计算,再延长一些),然后跑胶回收
我这样做出来的几乎都是阳性克隆,我都不做PCR了,直接测序个个阳性
其实在内切酶那里省钱,后面做菌落PCR就要花钱花时间了。
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3楼
2011-04-11 08:59:02
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roomofxw
木虫
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yuyan225(金币
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):谢谢参与
双酶切去磷酸化能很好的防止自连
菌落PCR没有什么问题么?
平板抗性还OK么……
上面是在键盘上随机敲出来的
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5楼
2011-04-11 09:07:26
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zhaohq1209
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2011-04-11 09:00
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Originally posted by
三磷酸腺苷
at 2011-04-11 08:59:02: 载体酶切不完全,去磷酸化是无法解决的………… 酶切不完全的意思是,根本没切开,或者双切只切了其中一段 其实最好的解决方案是,买好一点的内切酶(NEB、Fermentas),切够时间(按照酶活定义计算,再延长一些 ...
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