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oicqyutong

银虫 (小有名气)

[交流] 【求助/交流】western blot 一直都跑不出来,不知道原因,大侠给分析一下啊!?

大家好啊,本人系化学系一名学生,由于迫不得已,需要做western blot,从一点儿都不懂到现在能做走了很多弯曲的路。但是现在还没完全弄出来,又分析不出来原因,特来请教各位大虾们帮忙,小女子在此谢过了……

       我跑的蛋白是24kD的,做的是RNA的沉默。现在是连对照组都跑不出来。
      分析可能原因为
     1. 第一步的蛋白裂解没裂解好。我这次准备用的是1*10的6次方取3mL种到六孔板中,然后加60微升碧云天RIPA+PMSF裂解液。(之前是用的200微升裂解液裂解6孔板细胞)
         请问这个裂解液上的说明说是几秒钟,我直接几秒就可以还是要裂解1小时呢?
        上样量我是用的20微升,上16微升加4微升上样缓冲液。

    2. 跑胶问题我觉得应该是不大的,但是转膜的时候问题就来了。
        转膜时间问题:
                转膜的时候我用的是湿转(条件所限,没有别的方法,大虾不要挑这个毛病)。100V转2h,不知道有大侠做过的没?这个条件可以么?!但是我今天转的时候发现在用丽春红染色后,35KD下面的带颜色很浅,有时候几乎就是看不见,是转的时间忒长了还是转的时间短了呢?
        β-actin是肯定转上了,还有什么转膜时候的问题我就不知道了,请大家根据我情况给个指导吧!

      3. 封闭我是选择的5%BSA封闭1h,1抗1h,2抗1h,每个中间每次TBST洗10分钟*3次。
         我的1抗应该没什么问题。
         我的2抗是鼎国的山羊抗兔IGg,上面说明是1:5000-1:100000比例稀释,我稀释到5000,第一次非特异。后来把用过一次的稀释到1:8000就没有非特异了, 但是我要的蛋白也没出来。后来一次我稀释到1:8000还非特异,我就很无奈!洗照片的时候在一片黑中好像看到了一丁点儿更黑,希望是我要的,但是这个也不能用啊。
       4. 洗照片
          我用的方法是ECL显色,β-actin能看出来有一条很亮的带,但是,一直都看不到24KD那条带,不知道怎么回事儿。我现在很无奈,请哪位大侠给讲解一下吧。。。万分感谢啊!


         小女子在此再次拜谢啦……
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突然对科研有了兴趣,希望可以一直坚持下去!加油……
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oicqyutong

银虫 (小有名气)

引用回帖:
Originally posted by zhandeguo1 at 2010-09-28 21:28:09:
怕转膜转丢的话可以在转膜buffer里加上20%的甲醇。这样小蛋白就不会那么容易被转过了。

你好,我的已经加了甲醇了。但是还是没有啊。。。
突然对科研有了兴趣,希望可以一直坚持下去!加油……
5楼2010-10-12 21:39:39
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oicqyutong

银虫 (小有名气)

补充个~

哪位大侠有详细的western的跑过大概24KD左右的方法具体的资料给分一下,必定十万分的感谢啊!
突然对科研有了兴趣,希望可以一直坚持下去!加油……
2楼2010-09-28 21:20:47
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zhandeguo1

银虫 (小有名气)

western blotting

★ ★ ★
scelab(金币+3):欢迎多来交流!:tiger06: 2010-09-28 22:50:11
oicqyutong(金币+3):谢谢您的转膜时间的评价,我想问一些具体的! 2010-10-12 21:40:18
裂解的浓度6孔板60ul差不多了。上样量也应该没什么问题。这主要看你的一抗是否灵敏,一般这么多也够了。
裂解(RIPA+PMSF)时间我们一般是冰上30分钟。
'转膜时间应该是太长了,24KD  120V转半个小时差不多了。时间长了会转过的。
3楼2010-09-28 21:26:28
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zhandeguo1

银虫 (小有名气)

western blotting

怕转膜转丢的话可以在转膜buffer里加上20%的甲醇。这样小蛋白就不会那么容易被转过了。
4楼2010-09-28 21:28:09
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