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猪妹妹May

铁虫 (初入文坛)

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[求助] 【求助】ChIP超声效果检验的解交联问题/DNA弥散片段集中于5000bp

大家好，刚接触ChIP，遇到了比较疑惑的（猜测可能是）解交联的问题，希望大家能给予指导，先说声谢谢！

年前预实验交联（1%甲醛，5-10min）、超声（bioruptor plus-high-30s on/off-薄壁管）、解交联消化（65度0.25M Nacl振摇过夜、37度RNAse 2h、55度蛋白酶K 2h）、纯化DNA，有得到我们认为比较好的电泳结果，如图1所示。
【问题来了！

】正打算进一步确定最佳的交联时间和超声数的时候，出现了图2的电泳结果（DNA不弥散了集中在5000bp，感觉是基因组DNA的位置）。
于是陆续更换了甲醛、Nacl、蛋白酶K、RNAse，还参考论坛上的解交联条件变化了一下解交联和消化的顺序……换了新买的蛋白酶K之后，胶图终于有了一点变化，但主条带还是没有下来：请看图2。

旧样品里的H-25是第一张图的#7(之前解交联电泳结果不错的，取了-80冻的超声样品重新解交联），考虑到①H-25这个结果；

②25/30 cycle已经是一个比较长的超声时间了，12.5/15min，和文献中的也差不多；

③超声循环数的增加并没有使DNA条带发生一点点下移；

④lab另一位同学也做chip，他ip的不是TF所以直接用了SDS lysis buffer（1%SDS，我的sonication buffer里的SDS是0.1%）和国产的超声仪器（不记得型号了），其他试剂（甲醛、甘氨酸、Nacl、RNAse、蛋白酶K）都用的我的，顺利得到了理想的片段化基因。

所以我们更偏向认为是超声之后的步骤发生问题，但试剂基本换过了，实在排除不出原因。只好来论坛求助，有没有做过chip的大神能看出哪里出问题呢……

补充：

1.buffer配方：因为想要IP的是转录因子，所以当时和师兄参考了文献之后，决定自己配制比较温和的buffer（一直放在4度，使用前现加cocktail），配方如下：

lysis buffer I (50 mM HEPES-KOH, pH 7.6, 140 mM NaCl, 1 mM EDTA, 10% glycerol, 0.5% NP-40, 1% Triton X-100, protease inhibitors)

lysis buffer II (10 mM Tris-HCl, pH 8.0, 200 mM NaCl, 1 mMEDTA, 0.5 mM EGTA, protease inhibitors)

sonication buffer (20 mM Tris-HCl pH 8.0, 150 mM NaCl, 2 mM EDTA pH 8.0, 0.1% SDS, and 1% Triton X-100, protease inhibitors)

2.目前的解交联条件是：37 ℃ RNAse 1h，65 ℃ 0.2mM Nacl+蛋白酶K 静置过夜，酚氯仿异戊醇纯化DNA。上图最右测是分别不加蛋白酶K、不解交联、不加RNAse想看有啥影响，发现好像没啥影响，更疑惑了……更迷的是，不加蛋白酶K的效果反而更好。。总不会是蛋白酶K把DNA锁在那了吧，可DNA纯化应该也去掉了啊。。

3.之所以更改解交联的流程，一方面参考了其他人的步骤，另一方面是因为自己原本的protocol（65度0.25M Nacl振摇过夜、37度RNAse 2h、55度蛋白酶K 2h）65度过夜之后会出现小白片、片状沉淀，加了蛋白酶K之后消失。自己年前预实验的时候没有注意是否有这个现象，问了其他人没有这个高温析出蛋白的情况；不知道是否预示着哪里出了问题？

4.比对了buffer的成分，其实和常用的也挺像，感觉就是浓度低一些，按理说放四度不会有啥变化啊，可也没有别的东西能怀疑了。有没有朋友可以支支招？

大家有任何建议或提示都请评论，我先谢为敬！！！

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