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yjc8183

铁杆木虫 (著名写手)

[交流] 请问:用什么方法测定蛋白含量?

RT,近来计划测定一下动物组织的蛋白含量,查了下资料,有用普通分光光度计的,有用酶标仪的。这两者到底有没有差别,区别在哪里,希望思考过此问题并用过的大侠解答一下,顺便说说注意点。
另外,测定所用试剂也有很多种:BCA、lowry 法(folin 酚试剂法)、Bradford 法(考马斯亮蓝染色法),尽管看了许多文献,还是拿不定注意,请用过的虫友叙说一二,再次小虫多谢了!
没有用过的或者搜索出来结果的,在此谢谢你,就不要回答了。
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fxl530

木虫 (小有名气)


yjc8183(金币+1,VIP+0):非常感谢!请问酶标仪和分光光度计测定结果如何?如重复性、灵敏度等。 5-13 16:16
分光光度计和酶标仪没有区别的,酶标仪主要是一次可以测定多个样品,直接在酶标板中测定的。
lowry跟Brandford都可以,或者直接买试剂盒测定。Brandford法记得考马斯亮蓝一定是要过滤的否则根本不能用,切记。要注意的也就这个,其他的就直接照着方法做就行了。
2楼2009-05-13 16:07:41
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2die2005

金虫 (正式写手)


yjc8183(金币+1,VIP+0):谢谢,你们也是用分光光度计吗?我的量很少的,呵呵 5-13 16:18
我们实验室都是用的lowry法,貌似还不错的。PS:我们实验室都是做藻类的,所以基本上用的都是这个方法。
3楼2009-05-13 16:15:38
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guoxingjun2008

金虫 (正式写手)

Brandford法可以!
4楼2009-05-13 16:22:08
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hihoney

铁杆木虫 (职业作家)



yjc8183(金币+1,VIP+0):谢谢! 5-13 20:16
引用回帖:
Originally posted by guoxingjun2008 at 2009-5-13 16:22:
Brandford法可以!

有商品化的试剂盒,很方便。
5楼2009-05-13 20:06:09
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baisuilan

金虫 (正式写手)

★ ★ ★ ★ ★
yjc8183(金币+5,VIP+0):非常感谢!谢谢你的指教! 5-14 12:48
一般来说,分光光度计测出来的数据比酶标仪精确。但是,酶标仪多使用96孔酶标板,一次可以测96个数据,而分光光度计一般一次只能测一个读数,这样分次测其实更容易引入误差。有时候连标准曲线都做不出来。
我们实验室是用酶标仪的 , 考马斯亮蓝法,但SDS等去垢剂对吸光值有影响。适宜波长应该是595,但是酶标仪没有这个波长的,这也是个问题。我们就用最接近的620代替了,也可以用。
其实这些蛋白测定方法都不太精确,只能大致确定。如果想更精确,可以把你的样品梯度稀释一下多测几个重复。

[ Last edited by baisuilan on 2009-5-14 at 11:39 ]
6楼2009-05-14 11:36:47
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w.king124

金虫 (正式写手)



yjc8183(金币+1,VIP+0):谢谢! 5-14 13:23
lowry 法和Bradford 法测定的范围不一样,只有在测定范围内蛋白质含量才和吸光度成正比,Bradford测量范围相对大一些,如果蛋白含量比较高的话,建议用Bradford。但是,配制溶液比较麻烦,而且很容易污染。
看好多国外的文献(植物),都是用的BCA法
7楼2009-05-14 12:59:20
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liuke009

铁杆木虫 (著名写手)


yjc8183(金币+1,VIP+0):谢谢! 5-14 13:24
我一般都用Bradford 法,96孔板或者比色皿的都用过,当然多稀释几个梯度是必须的。
还有一种方法是酸水解成氨基酸,再测氨基酸的含量。
这些方法都很粗糙,不过楼主测测组织蛋白总含量,应该也不是要最精确的数据吧,应该够用了
8楼2009-05-14 13:06:41
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圆头

金虫 (小有名气)

1、Folin-酚试剂法(Lowry法):灵敏度高(~5mg),原理是双缩脲反应,磷钼酸-磷钨酸试剂被Tyr和Phe还原,干扰物质有硫酸铵、Tris缓冲液、甘氨酸、各种硫醇.需时50分钟左右。具体方法见《药典》第三部。检测重现性好。主要蛋白质产品的定量检测。现在有商品的Folin试剂(Bio-Rad等公司),不用实验室自己配制,克服了此方法的一大缺点。生化生物药品的质量标准中的蛋白定量大都用此法。


2、考马斯亮蓝法(Bradford法):1976年由Bradford建立。灵敏度最高(1mg),比Lowry法灵敏约4倍。原理是考马斯亮蓝G-250与蛋白质(主要是与蛋白质中的碱性氨基酸特别是精氨酸和芳香族氨基酸残基)结合时,其最大吸收由465nm变为595nm。干扰物质有强碱性缓冲液、TritonX-100、SDS。需时20分钟左右。目前科研单位、高校普遍用此法,我感觉稳定性比Lowry法差一些。

3、凯氏定氮法(Kjedahl法):最精典的蛋白含量测定方法,操作步骤多,复杂,要求的技术也较高一些。将蛋白氮转化为氨,用酸吸收后滴定,计算氮量,蛋白氮乘以6.25即推算出蛋白质含量。不少生化药用此法定氮或测蛋白含量。

4、紫外吸收法:原理是蛋白质分子中,酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸残基的苯环含有共轭双键,使蛋白质具有吸收紫外光的性质。吸收高峰在280nm处,其吸光度(即光密度值)与蛋白质含量成正比。此外,蛋白质溶液在238nm的光吸收值与肽键含量成正比。简便、灵敏、快速,不消耗样品,测定后仍能回收使用。准确度较差,干扰物质多,在用标准曲线法测定蛋白质含量时,对那些与标准蛋白质中酪氨酸和色氨酸含量差异大的蛋白质,有一定的误差。特别适用于柱层析洗脱液的快速连续检测,因为此时只需测定蛋白质浓度的变化,而不需知道其绝对值。测定时,将待测蛋白质溶液倒入石英比色皿中,用配制蛋白质溶液的溶剂(水或缓冲液)作空白对照,在紫外分光度计上直接读取280nm的吸光度值OD280。蛋白质浓度可控制在0.1~1.0mg/ml左右。通常用1cm光径的标准石英比色皿,盛有浓度为1mg/ml的蛋白质溶液时,OD280约为1.0左右。由此可立即计算出蛋白质的大致浓度。

5、双缩脲法(Biuret法):灵敏度低(1~10mg),原理是多肽键+碱性Cu2+®紫色络合物,用于快速测定,但不太灵敏;准确度低一些。



6、总蛋白定量分析-BCA(Bicinchoninic acid,二辛可宁酸、二羧基二喹啉):BCA试剂的蛋白质测定范围是20-2000μg/ml,45分钟内完成测定。原理是碱性条件下,蛋白将Cu2+还原为Cu+, Cu+与BCA试剂形成紫颜色的络合物,测定其在562nm处的吸收值,并与标准曲线对比,即可计算待测蛋白的浓度。
9楼2009-05-14 13:48:08
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