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北京石油化工学院2026年研究生招生接收调剂公告
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meng_xu

铜虫 (小有名气)

引用回帖:
15楼: Originally posted by 成功源于想像 at 2014-05-24 12:13:19
“1. 没有问题,20k的我也转过”
之前做了二个6+2K的,很顺利,阳性率接近100%,这次10k, 我以为算大的了呢~

“2. 个人一般做60s”
你做的时候,用的什么管子呢?据说这个管子的厚薄对转化是有影响的,管子薄 ...

就是普通的1.5ml管,我用水浴,没什么问题。

对于连接的转化,如果要是室温连接,那么你的感受态最好效率高些。

平板上标记不是很常用的操作么?你挑选克隆的时候,圈上,标记,然后回头找的时候知道哪个菌落对应哪个菌液。
21楼2014-05-25 02:39:45
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DAX1

新虫 (小有名气)

引用回帖:
19楼: Originally posted by 随风飘摇11 at 2014-05-24 17:45:21
嗯,我们实验室都是用的Takara的酶,我的是PAS2 载体,基因1700bp,用的spe1和nde两个酶,37°切三个小时,酶切后跑胶,和空载体比较是切开了(但是切完全没有我也就不知道了),酶连转化能长出来菌,但是挑了60/70 ...

你要是担心酶切不完全,可以多切几个小时,我一般处理载体都会酶切6-8个小时。和你所说的一样,你看不出来单酶切或者双酶切的区别(除非两个酶切位点之间的序列超过一定长度)。不知道你连接时候做了自连对照没有?就是将片段换成水,如果你的自连和你的片段连接都差不多的话,那证明你的酶切是有问题的。至于连接体系比列,和我上面说的那样,摩尔比1:1到1:3之间都可以,你可以Google下怎么计算,况且粘端的话,一般情况随便多少都可以连进去的。至于你的载体能否蓝白筛选,你得看你得载体信息啊,你们买载体时应该有protocol吧。其实蓝白筛选也没多大得意义。因为你效率高得情况下,基本都没有蓝斑,而且白斑也不都是阳性。
22楼2014-05-25 03:15:41
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随风飘摇11

木虫 (著名写手)

引用回帖:
22楼: Originally posted by DAX1 at 2014-05-25 03:15:41
你要是担心酶切不完全,可以多切几个小时,我一般处理载体都会酶切6-8个小时。和你所说的一样,你看不出来单酶切或者双酶切的区别(除非两个酶切位点之间的序列超过一定长度)。不知道你连接时候做了自连对照没有? ...

自连对照应该就是就是只切载体,然后连接做转化,如果能够长出来菌就说明酶切没有完全?是这样子吗?

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天道酬勤
23楼2014-05-25 08:20:39
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成功源于想像

铜虫 (小有名气)

引用回帖:
18楼: Originally posted by DAX1 at 2014-05-24 17:34:11
100挑一个,好吧,楼主你真幸运。一般双酶切不会有问题的,你可以考虑用下NEB的酶。理论上来说粘端嘛,应该只有阳性克隆,你得效率实在太低了,做一个克隆还好,你要是做很多的克隆那还不累死了。...

恩,这次是运气好,接下来的两个载体肯定不能这么做了~~
24楼2014-05-25 14:43:15
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成功源于想像

铜虫 (小有名气)

引用回帖:
21楼: Originally posted by meng_xu at 2014-05-25 02:39:45
就是普通的1.5ml管,我用水浴,没什么问题。

对于连接的转化,如果要是室温连接,那么你的感受态最好效率高些。

平板上标记不是很常用的操作么?你挑选克隆的时候,圈上,标记,然后回头找的时候知道哪个菌落 ...

哈哈,我以前都是直接挑,摇菌,然后检测,所以没标记过~现在想早点知道结果,才想到了先检测然后才摇菌~
25楼2014-05-25 14:45:18
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DAX1

新虫 (小有名气)

引用回帖:
23楼: Originally posted by 随风飘摇11 at 2014-05-25 08:20:39
自连对照应该就是就是只切载体,然后连接做转化,如果能够长出来菌就说明酶切没有完全?是这样子吗?
...

是的,就是将你的片段换成水,多做个连接和转化
26楼2014-05-26 02:52:31
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xiaofang1222

新虫 (初入文坛)

1、可以尝试载体和片段的不同连接比例
2、用电转的方法试下
3、42度热击50s-90s
27楼2015-06-04 10:15:36
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piaoyidetian

新虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖

连接体系加PEG(配套的有) 会提高成功率
28楼2015-06-04 14:39:32
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