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诺曼底1227铁杆木虫 (正式写手)
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immunocytochemistry实验的问题
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最近在做用一些细胞的surface marker antibody来染细胞,并且通过荧光显微镜来观察这些marker的表达情况,但不知道为什么总是只能观察到DAPI染的细胞核,而看不到surface marker的表达。不过我做过flow,flow结果现实的是positive results,所以觉得可能是我实验操作的问题,所以想请教一下各位高手,能不能帮我看一下我的实验步骤有什么问题,多谢 实验基本步骤如下: 1. 用2% formalin固定30min 2. 将antigen retrieval buffer(我用的是Tris-EDTA, 10mM Tris Base, 1mM EDTA, 0.05% Tween 20, pH 9.0)煮沸,将种有细胞的slide放进去,煮大概20min; 3. 用1% BSA-PBS溶液block 1h,室温; 4. 用blocking buffer稀释的CD29一抗来和slide孵育2h, 室温; 5. 用blocking buffer稀释的含有FITC的二抗和slide孵育1h,室温; 6. 用PBS洗slide三次,每次5min; 7. 用DAPI染色 大概步骤就是上面所说的。 不知道有什么问题没有?我也问过买CD29的公司,他们的回复是说CD29可以用作ICC的,但必须要做antigen retrieval这一步。 请各位帮帮忙,多谢 |
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