|
|
【答案】应助回帖
★ ★ ★ ★ ★ 感谢参与,应助指数 +1 小丹木木: 金币+5, MolEPI+1, 相当热心,还很详细哦 2013-04-16 16:44:59
PBS配制1L:
NaCl 8.0g
KCl 0.2g
Na2HPO4•12H2O 3.58g
KH2PO4 0.27g
调pH至7.0-7.2,高压灭菌
细胞周期检测
(1) 细胞培养于含10%新生牛血清的RPMI-1640培养基,细胞近80%融合时传代;
(2) 制备细胞悬液:取对数生长期细胞,胰酶消化后,加入含10%小牛血清的RPMI-1640培养基,吹打制成单个细胞悬液;
(3) 细胞接种:细胞计数后以细胞数2×105个/孔接种到六孔板,加入适量的培养基至2mL/孔,静置待细胞沉到板底后放入培养箱于37℃ 、5% CO2培养;
(4) 药物处理:细胞静置培养24h,观察细胞已完全贴壁后,分别给予不同浓度的药物(DMSO含量为1‰),阳性对照组给予。。。。,阴性对照组给予同体积的DMSO,每个浓度设两孔;
(5) 收集细胞:培养48小时后用不含EDTA的胰酶消化细胞,并与原培养液一起离心收集细胞(4℃、1000g、5min),冰预冷的PBS重悬细胞并离心沉淀细胞;
(6) 固定细胞:吸除上清液,可残留约50μL,避免吸走细胞,边震荡边加入1mL冰预冷的70%乙醇,轻轻吹打混匀细胞,于4℃固定过夜;
(7) 收集细胞:离心收集细胞(4℃、1000g、5min),用冰预冷的PBS重悬一次并离心沉淀细胞;
(8) 细胞染色:吸除上清液,可残留约50μL,避免吸走细胞,每个样品加入0.5mL配好的染色液(含PI,RNA酶,染色缓冲液),缓慢并充分重悬细胞沉淀,于37℃避光温浴30分钟;
(9) 上机检测:染色完成后用流式细胞仪在激发波长488nm处检测红色荧光。
流式细胞仪分析:
(1) 按流式细胞仪操作规程开启仪器,用FL2的荧光通道来采集PI的信号;
(2) 取500μL样本转移到专用的流式上样管,上机前轻轻弹击试管底部混匀细胞,先用阴性对照组上机调试仪器;
(3) 打开获取实验数据的软件CellQuest,确定DDM门(doublet discrimination module,黏连体辨别模式)的参数是FL2;
(4) 分别画一个FSCvs.SSC散点图、FL2-Wvs.FL2-A散点图、FL2-A的直方图;
(5) DNA分析时,FSC、SSC和FL2都使用线性模式采集信号,调节FL2的电压,使FL2-A的G1期细胞的峰位于200道数的位置上;
(6) 实验条件调节好后可以上机检测,DNA检测时最好用低速收。 |
|