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yiyijiayou21

新虫 (初入文坛)

[求助] Nhe I和Hind III 双酶切pcDNA3.1(+)和目的片段2300bp,却连不上,求各位帮忙啊

我用Nhe I和Hind III 双酶切pcDNA3.1(+)和目的片段2300bp,胶回收连接后挑菌提质粒跑电泳发现比原来空载的质粒还要小,而且单酶切后大小差不多,郁闷了很长时间,希望大家帮帮忙啊!!!!还有就是,谁有pcDNA3.1(+)的酶切位点图谱,可否发一下,急求啊!!!谢谢谢!!!
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yiyijiayou21

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
6楼: Originally posted by 酶切专家 at 2013-03-10 23:55:06
你各个电泳道上分别是什么?Marker的大小?
问题:
1:你的质粒理论长度是多少?单酶切后显示的大小与预期一样吗?如果不一样,则需要考虑质粒是否弄错了。
2:你做的是哪一个酶的单酶切?建议也做一下另一个酶的 ...

Marker是λ-HindIII,条带从上到下大小是23130bp,9416bp, 6557bp, 4361bp,质粒载体的理论长度是5.5kb的,双酶切(NheI和HindIII)以后5.4kb和100bp,双酶切的两个酶的buffer是一样的,单酶切则是用的之前Bgl II做的酶切留下来的样品,上样顺序是单酶切,双酶切,原载体;提取质粒测的浓度时500ng/μl,260/280是1.88,260/230是2.3。应该还是可以的啊!!

昨天重新的双酶切,50μl体系,NheI和HindIII 的用量分别是:3.5和2μl,过夜酶切八个小时左右,回收电泳时还好,但是胶回收以后再跑鉴定电泳,就依然是这样酶切前的质粒比酶切后的质粒大了!!
第一张图是胶回收的,第一个是酶切前的质粒,第二个和第三个都是酶切后的(质粒的量不同);第二张图是胶回收以后又跑的鉴定的电泳图,顺序和第一张图一样!

2013-3-11质粒酶切鉴定pcDNA(质粒,双酶切AB).jpg



2013-3-11质粒 酶切鉴定pcDNA(质粒,双酶切AB,c).jpg

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7楼2013-03-11 16:09:40
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酶切专家

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★ ★ ★ ★ ★ ★
感谢参与,应助指数 +1
小丹木木: 金币+2, 鼓励应助 2013-03-03 21:36:04
yiyijiayou21: 金币+5, 有帮助 2013-03-10 15:30:50
酶切图谱http://tools.invitrogen.com/content/sfs/vectors/pcdna3.1-.pdf

从你的描述来看,可能是你的载体和外源片段酶切不完全(尤其是载体酶切不完全),导致大量的载体自连,所以都是空载体。
你用的这两个酶中,NheI所需的酶量比较多(因为各个酶的单位定义是不一样的)。我了保证酶切完全,我建议你用double digestion designer(进行双酶切设计,该软件可以精确计算酶切时所需要的酶量,保证完全酶切。我用此软件帮你算了一下,如果你酶切2ug pcDNA3.1,NdeI(NEB)需要35U,HindIII(NEB)只需要6U.如果你按照所谓的经验加酶量,则NheI肯定不够,导致NheI位点酶切不完全,最终导致载体自连。类似的,你可以用此软件计算完全酶切外源片段的酶量。祝好运。这个软件的链接如下:http://www.bioinfomatics.cn/enzyme/showresult.php,可以免费试用。
2楼2013-03-03 20:03:21
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yiyijiayou21

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 酶切专家 at 2013-03-03 20:03:21
酶切图谱http://tools.invitrogen.com/content/sfs/vectors/pcdna3.1-.pdf

从你的描述来看,可能是你的载体和外源片段酶切不完全(尤其是载体酶切不完全),导致大量的载体自连,所以都是空载体。
你用的这两个 ...

你好,还想问一下,前两天又做了一次,但是结果还是不行,然后 做了一个酶切前后的质粒对比,发现双酶切后的质粒比双酶切前的原载体还要大,想问一下这是怎么会这样啊?!!!
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3楼2013-03-10 15:25:30
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酶切专家

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

★ ★
gyesang: 金币+2, 鼓励应助 2013-03-13 20:01:26
首先,你需要明确:制备的质粒一般是三种状态的混合物,超螺旋DNA,线性DNA,环状但非超螺旋DNA。电泳时,超螺旋DNA电泳比较快,线性DNA位于中间(对照DNAmarker,其电泳位置应该与其理论大小一致),环状但非超螺旋DNA电泳最慢。  当你用质粒提取试剂盒制备质粒时(按照标准方法),电泳检测时,质粒应该主要是超螺旋DNA条带,在线性DNA位置为出现一条较弱的带,偶尔会出现环状但非超螺旋DNA。这就表明,制备的高质量的质粒DNA在电泳时,其主要条带位置应该在其理论分子量大小的前面(即看起来比理论分子量小)。但如果你用已知的一个酶进行单切后,再电泳时,就发现其电泳位置应该与其理论分子量一致(即线性DNA的位置)。

根据此特点,可以用酶切前后的电泳带型的变化来判断你的同一个DNA样品的单酶切是否完全。
具体做法是:
设计一组酶切实验:A:不酶切的DNA对照;B:酶1单酶切样品,C:酶2单酶切样品
酶切1-2小时后,同时进行电泳分析,根据电泳时的带型,就可以知道酶1和酶2是否酶切完全。酶切完全的样品其主要带的位置在线性DNA的位置,在超螺旋DNA的位置看不见或很淡。否则,如果在超螺旋DNA的位置出现很明显的条带,表明酶切不完全。酶切不完全的原因有以下几种可能:1;质粒的质量不是很好,存在一些变性的DNA,无法被酶切开,2.可能是你的酶保存不当,酶已经失活。3.你加的酶量不够,导致酶切不完全。你需要针对这些可能,再逐步排除。

希望对你有帮助
4楼2013-03-10 20:05:23
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