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细胞问题
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361440594
木虫
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[交流]
细胞问题
有谁知道细胞的固定方法还有哪些?(除了用适体固定和用玻璃固定)最好附上方法或文献!
还有谁知道BGC细胞是贴壁细胞吗?如果用缓冲液洗的话会不会被冲掉?
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2011-05-19 14:57:54
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dhd997
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):谢谢参与
1949stone(金币+2): 自己动手 丰衣足食 2011-05-19 18:26:42
361440594(金币+10): 谢谢 2011-05-19 19:22:10
回答你第二个问题。不会被洗掉,绝对的贴壁。想让他掉,必须消化。
至于第一个问题,就下你说的,查文献吧。
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2楼
2011-05-19 18:24:07
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木虫
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Originally posted by
dhd997
at 2011-05-19 18:24:07:
回答你第二个问题。不会被洗掉,绝对的贴壁。想让他掉,必须消化。
至于第一个问题,就下你说的,查文献吧。
什么是消化?小弟第一次做细胞方面的东西?还有问你一下,BGC细胞有DNA适体吗?(就是可以和细胞表面结合的DNA链)?
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3楼
2011-05-19 19:21:55
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dhd997
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细胞培养知识还不懂?你周围的人没有做的吗?空说很难说清楚。
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2011-05-19 19:43:31
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Originally posted by
dhd997
at 2011-05-19 19:43:31:
细胞培养知识还不懂?你周围的人没有做的吗?空说很难说清楚。
没啊,所以很苦恼嘛!
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5楼
2011-05-19 22:07:54
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cdl007
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):谢谢参与
361440594(金币+10): 2011-05-20 08:24:43
dhd997(金币+6, EPI+1): good 2011-05-20 08:28:34
培养细胞常用固定剂有4%多聚甲醛磷酸缓冲液、丙酮、甲醇和95%乙醇。在固定之前需用37℃预热的PBS轻洗细胞。
1.4%多聚甲醛磷酸缓冲液 固定10—20分钟,干燥。
2.甲醇 10‰甲醇固定5—20分钟,自然干燥。
3.丙酮 4℃冷丙酮固定组织穿透性和脱水性强,抗原保存好,很少用于组织切片,常用于培养细胞和细胞涂片的固定,平时丙酮4℃低温保存备用,临用时,将载玻片插入冷丙酮内5~10分钟,取出后自然于燥。
4.乙醇 95%乙醇脱水性强,易引起组织收缩、变硬,影响切片质量,因而固定时间不宜过长(2小时内)。乙醇使蛋白变性程度轻,固定后蛋白可再溶解,在染色中孵育时间长的情况下,抗原可流失,并减弱反应强度。
5.乙醚(或三氯甲烷) 与乙醇等量混合对组织穿透性极强,即使涂片上含较多的黏液,固定效果仍较好,是理想的细胞固定液。
培养细胞固定之后晾干可使细胞牢固地黏附在载玻片上,故对于容易脱落的细胞应延长晾干时间。晾干之后PBS漂洗3次,然后进行组织化学或免疫组织化学染色。
用于免疫组织化学的固定剂种类很多,不同的抗原和标本均可首选醛类固定液,如效果不佳,再试用其他固定液。选择最佳固定液的标准:一是能最好地保持组织细胞的形态结构;二是最大限度地保存抗原免疫活性和被检物不被丢失。
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2011-05-20 06:25:40
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Originally posted by
cdl007
at 2011-05-20 06:25:40:
培养细胞常用固定剂有4%多聚甲醛磷酸缓冲液、丙酮、甲醇和95%乙醇。在固定之前需用37℃预热的PBS轻洗细胞。
1.4%多聚甲醛磷酸缓冲液 固定10—20分钟,干燥。
2.甲醇 10‰甲醇固定5—20分钟,自然 ...
你说的这几种方法不会影响细胞及其表面的生物活性吧,比如我要在细胞表面接上DNA适体或引物之类的,不会受到影响吧?
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7楼
2011-05-20 08:28:28
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Originally posted by
cdl007
at 2011-05-20 06:25:40:
培养细胞常用固定剂有4%多聚甲醛磷酸缓冲液、丙酮、甲醇和95%乙醇。在固定之前需用37℃预热的PBS轻洗细胞。
1.4%多聚甲醛磷酸缓冲液 固定10—20分钟,干燥。
2.甲醇 10‰甲醇固定5—20分钟,自然 ...
对Ramos细胞,最好的固定液是哪种?
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8楼
2011-05-26 21:27:48
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蝈_屯
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):谢谢参与
西瓜(金币+3): 鼓励交流 2011-06-27 17:19:04
消化时需用消化酶,这样理解起来就容易了吧,比如说可以把组织消化成细胞
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9楼
2011-06-26 22:15:47
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