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xiajing_acm

新虫 (小有名气)

[求助] 关于MTT加液与弃液的一些思考与疑问

给位大侠:

你们好,小弟要着手MTT,里面有些问题不太清楚,请给位指点:

1、种板时我每孔打算加100μl 共5000个左右细胞,等细胞贴壁后需不需要把培养液吸出之后再加入100μl

的药液呢?我看有的资料上说直接加入100μl药液维持到200μl的体系,可是我是按照100μl体系来算的加药量啊,如果不吸走里面原有的100μl培养液的话,那我的药物浓度岂不被稀释了一倍吗?

2、加药处理适当时间后,在加MTT需不需要把里面的培养液吸出来呢?若吸出来的话,那么是直接加入20μl 的5mg/ml的MTT呢,还是需要加入180μl新鲜的培养液+20μl 5mg/ml的MTT呢?是用含血清的培养基还是不含血清的?

3、加DMSO之前需要吸走培养液吧?给位战友是怎么操作才能保证不把甲瓒结晶吸走呢?需要在平板离心机上离心吗?

4、上酶标仪检测波长到底选择多少合适呢?490还是570nm呢?还需要设630nm参比波长吗?参比波长作用是什么呢?怎么用它的数据呢?

非常感谢各位大侠,盼早日解决!祝各位一切顺利!
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wenzhiren

木虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

qinhy(EPI+1): 2011-05-01 08:01:56
引用回帖:
Originally posted by xiajing_acm at 2011-04-21 16:50:25:
给位大侠:

你们好,小弟要着手MTT,里面有些问题不太清楚,请给位指点:

1、种板时我每孔打算加100μl 共5000个左右细胞,等细胞贴壁后需不需要把培养液吸出之后再加入100μl

的药液呢?我看有的资料上 ...

1、你可以吸出50,再加入50ul新的培养基,其中药物浓度翻倍。
2、一般不用吸出原来的培养基,直接加入10ulMTT即可。
3、这个问题要看细胞贴壁牢固程度了,想前面那位大侠,细胞贴壁牢固,直接把板反过来,下面垫无菌吸纸,培养基就会被自动吸走;如果细胞贴壁不牢固,那你就要考虑把板倾斜了,把其中的培养基轻轻吸出来,但是要注意,tips头部不要碰到板的地步,否则会吧细胞粘下来。还有些悬浮细胞MTT时,直接往里面加入裂解液了,也是可以把甲瓒溶解的。
4,一般选择490nm波长。
5楼2011-04-22 15:47:07
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010.zilong

银虫 (初入文坛)

【答案】应助回帖


karl2100(金币+1): 谢谢回帖! 2011-04-24 19:07:52
xiajing_acm(金币+5): 2011-04-27 19:42:28
qinhy(EPI+1): O(∩_∩)O谢谢 2011-05-01 08:01:45
1.这个主要看你的药物性质以及培养时间,因为在培养基中存在的血清,成分复杂,有时会干扰MTT结果,所以需要吸出原培养液后再给药,但也有一种可能,即培养时间比较长,细胞个数大则会把培养液中所含有的血清消耗掉,这样就不用换液了,对于后半个问题,你加倍浓度不就OK了吗?
2.如果细胞帖的紧,一般来说要把原液吸出去,否则MTT会与一些药物形成二聚体影响结果.用不含血清的培养基采用后一种办法加入.
3.这个是肯定得吸走的啊,我做过SY5Y,直接把板子倒过来,扣去液体即可.没试过离心,但原理上应该可以.
4.不需要参比波长,490-570都行,看你的颜色深浅而定
仅供参考嘿嘿
3楼2011-04-22 14:21:57
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Chlo_Q

木虫 (著名写手)

【答案】应助回帖


karl2100(金币+1): 谢谢您的回复! 2011-04-24 19:08:12
xiajing_acm(金币+5): 2011-04-27 19:42:39
qinhy(EPI+1): 2011-05-01 08:02:06
首先,我也考虑过这个问题1,最后的解决方案是将药物配成100倍液,加的时候我就直接往100里加1微升了。主要考虑的不是药的浓度问题,因为这要确定好之后才好配的,而是控制变量的问题,体积大了,细胞的环境就不同了。。。
2.MTT的原理你有没有了解,它是靠活细胞的酶反应,我认为,不要饿着它了,原来是什么培养液就继续用那个,如果不是培养了太久,就直接加MTT了(除非,你的药物具有还原性!!)
3.论坛里有一帖,很详细的讲了MTT法,里面有,建议搜一下看看,我看了很受用
4.我用着的是570测定,630参比。没方法,还是贴个链接你吧,http://www.biomart.cn/experiment/430/488/498/17544_1.htm
其他论坛上的,说法有多种,仅供参考
你的理想是什么?你能为你的理想做什么?为了你的理想你能放弃什么?
6楼2011-04-24 11:06:19
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