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求助:怎样用培养的细胞做PCR
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培养了一大堆血管内皮细胞,老板说该用来做PCR了,说完就走了,老板是美国人,在下刚进实验室没几天,完全找不到北。 补充一下,我的课题大概思路是这样的,血管内皮细胞的某一段DNA序列(目前我对这段基因完全不了解)产生一种标记性蛋白,现在要检测加入某种生长因子后对产生这种蛋白有何影响。所以先培养了些血管内皮细胞,下一步我该怎么进行呢?为什么要我做PCR?其目的何在?我现在有一大堆细胞,该怎么来进行PCR?第一步是什么?恳请高手们指点,多谢啊! [ Last edited by 350784478 on 2009-9-6 at 08:33 ] |
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wangqk198738
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很不同意楼上的几位!!!!
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这位老兄都不知道自己再干什么,你们就盲目的叫他这,叫他那!恐怕他都不知道自己什么专业出身,要是生物专业的人,你可给我们生物人“小孩他妈丢了——丢大人了!”你老板是想让你检测一下目的基因存在与否。你就提RNA就是了,应当是提取总RNA,一般没必要非得提取mRNA,这很麻烦,就光是提取mRNA看来也要你忙一阵子了,千万万要注意提取过程中那些致癌的试剂,可能你会用到DEPC(焦炭酸二乙酯),戴口罩啊,手里抱着一本冷泉港的分子指南或者精编分子指南也行。下面来自我论文中的一段东西,对你这个初学者应该有用的:2.1.3 主要菌种 大肠肝菌DHα5(缺少lacZ基因的近操纵基因区段) 2.1.4 主要试剂 RNA、DNA提取试剂:(1)0.1% DEPC-H20(2)TE3D溶液(3)饱和酚水溶液,加0.1% hydroxyquinoline(羟基喹啉)(4)氯仿/异戊醇(24/1)(5)醋酸铵(3M,高压灭菌)(6)LiCl(8mol/L)(7)无水乙醇(8)70%乙醇(9)石英砂 反转录体系试剂:M-MLV RT酶、M-MLV5×Reaction Buffer、dNTPs、OligodT、超纯水;购于Promega公司 PCR反应体系试剂:Taq酶,dNTPs,超纯水,引物,10×Buffer反应液,购自Takara公司; 蓝白斑筛选体系试剂:pMD19-T Vector、Control Insert、Insert DNA、Ligation Mix、X-gal、IPTG、AMP、双蒸水,购于Takara公司 电泳检测体系试剂:10×Loading buffer;EB, DL100Marker 购自天根(北京)科技有限公司。 培养基试剂:胰蛋白胨,酵母提取物(购自英国OXOID公司),氯化钠,琼脂(北京索莱宝科技有限公司)。 氯化钙(0.1mol/L)与其它化学试剂均为分析纯。 水:超纯去离子水,作PCR用RNase-free水。 2.1.5 主要试剂盒 DNA片段快速胶回收试剂盒购自Takara公司 pBS-TⅡ快速连接试剂盒 2.1.6 试剂配制 TE3D溶液配制: 水 95ml Tris(2M) 48.4g Na2EDTA(0.2M) 14.8g Nonidet P-40(10%) 20g LDS(15%) 30g 去氧胆酸钠(10%) 20g 加水至200ml 氨苄青霉素(Amp 100mg/ml),购自北京鼎国生物技术有限公司。 70%的乙醇:取70ml浓度为95%的分析纯乙醇加水至95ml。 2.1.7 配制1%的琼脂糖凝胶 0.3g琼脂糖用30ml 1×电泳缓冲液,加热煮沸溶解,冷却至一定温度后加入极少量(5µl)溴化乙锭(EB)溶液。 2.1.8制备LB培养基 胰蛋白胨 (购自英国OXOID公司) 3 g 酵母提取物 (购自英国OXOID公司) 1.5 g 氯化钠 3 g 用蒸馏水定容至300 ml,调节pH至7.0,121℃高压蒸汽灭菌20 min,4℃保存。 固体LB培养基:于500 ml液体LB液体培养基中,再加入琼脂粉5 g,调节pH至7.0,121℃高压蒸汽灭菌20 min,4℃保存。 一、RNA的提取: 1、配制Phenol-TE3D溶液:将一份TE3D与2份饱和酚水溶液混合,加入β-巯基乙醇(1%)备用。使用量:1.5ml/g组织。 2、取新鲜叶片约200mg,加300µl Phenol-TE3D溶液,少量石英砂,于小型研钵中迅速研磨,匀浆倒入1.5ml EP管中。以下步骤保持低温。 3、加400µl氯仿/异戊醇(2ml/g组织),250µl醋酸铵(1.25ml/g组织),涡旋1分钟,混匀。 4、4℃下离心,12000rpm,15分钟。 5、仔细取出上清(约200-250µl)至另一EP管中。 6、加入等体积LiCl,混匀,于冰盒放置1小时。 7、4℃下离心,12000rpm,30分钟。 8、DNA存在于上清液中,吸取上清液另存于另一无菌EP管备用。沉淀为RNA,用70%乙醇洗涤,4℃下离心5分钟,沉淀干燥后加入30µl水。 9、存放于-70℃备用 2.2.4反转录步骤: 一、cDNA第一条链的合成: 1、在无RNase经过灭菌的小离心管中加入2µl RNA,0.5µl OligodT引物。用水补足15µl。 2、70℃下水浴5分钟,打开模板的二级结构。 3、立即冰浴阻止二级结构的再生。 4、稍做离心,收集小管底部的溶液。 二、按顺序加入以下试剂: 1、M-MLV5×Reaction Buffer——5µl 2、dNTPs——5µl 3、RNasin——25 units 4、M-MLV反转录酶——200 units 5、ddH2O——总体积至25µl 三、轻弹离心管,混匀试剂。42℃下水浴60min。延伸温度最适宜在37℃-42℃。 四、保存于4℃冰箱。 2.2.7 大肠杆菌感受态细胞的制备(整个过程需无菌操作) 1)保存于-70℃的JM109菌种用接种环划菌于1.2% 琼脂平板上,37℃恒温倒置至单菌落出现(约14-16 h)。 2)挑取单菌落,接种于30 ml LB液体培养基中,37℃恒温,170 rpm振荡培养过夜(约12 h)。 3)取0.5ml过夜培养液,接种于50ml液体培养基中,37℃振荡培养2-2.5 h,至OD600为0.4-0.5 h,停止培养。(此处可凭经验,用肉眼观察,菌液较浑浊)(注:以下操作均应在冰浴中进行。) 4)将全部菌液转入40 ml离心管(灭过菌的)中,每个离心管25 ml,冰上放置10 min。 5)4℃离心,2500 rpm,10 min,回收细胞。倒出培养液,将管倒置于滤纸上1 min。 6)用冰冷的CaCl2(0.1mol/L)5 ml悬浮细胞,立即放冰上保温30 min。 7)4℃离心,2000 rpm,10 min,回收细胞。 8)用冰冷的CaCl2(0.1mol/l)1 ml悬浮细胞。然后将离心管置于冰上,放4℃冰箱过夜。 9)分装感受态细胞,每只EP管中加入200 µl悬浮液和200 µl 80% 甘油,封好,然后立刻放入-70℃冰箱中保存备用。 2.2.8 PCR产物回收 PCR产物使用回收试剂盒回收,具体步骤如下: 1.使用TBE缓冲液制作琼脂糖凝胶,然后对目的DNA进行琼脂糖凝胶电泳。 2.在紫外灯下切出含有目的DNA的琼脂糖凝胶,用纸巾吸尽凝胶表面的液体。此时应注意尽量切除不含目的DNA部分的凝胶,尽量减少凝胶体积,提高DNA回收率。 3.切碎胶块。胶块切碎后可加快操作步骤6的胶块融化时间,提高DNA的回收率。 4.称量胶块重量,计算胶块体积。计算胶块体积时,以1 mg=1µl进行计算。 5.向胶块中加入胶块融化液DR-Ⅰ Buffer,加入量如下: 凝胶浓度 DR-Ⅰ Buffer使用量 1.0% 3个凝胶体积量 6.均匀混合后75℃加热融化胶块。此时应监督振荡混合,使胶块充分融化(约6-10分钟)。 7.向上述胶块融化液中加入DR-Ⅰ Buffer量的1/2体积量DR-Ⅱ Buffer,均匀混合。 8.将试剂盒中的Spin Column安置于Collection Tube上。 9.将上述操作7的溶液转移至Spin Column中,12,000 rpm离心1 min,弃滤液。 10.将500μl的Rinse A加入Spin Colmun中,12,000rpm离心30 s,弃滤液。 11.将700μl的Rinse B加入Spin Column中,12,000 rpm离心30 s,弃滤液。 12.重复操作步骤11。 13.将Spin Column安置于新的1.5 ml的离心管上,在Spin Column膜的中央加入25μl的Elution Buffer,室温静置1 min。 14.12,000 rpm离心1min洗脱DNA。 照我这个方法体总RNA应该没问题的。不管是动物细胞还是植物细胞应该都行的。 如果老板有相当多的钱,那就整个过程都用试剂盒好了,方便快捷,效率高。不明白的就直接给我发短消息吧,我再教你,唉,可怜的孩子呀! |
7楼2009-08-25 10:21:12
16楼2009-10-07 15:43:04
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holyala
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我本科做的好像跟这个比较像,就是植物(拟南芥和菊花)响应外界刺激(声波)所做出的反应。技术用的是RT-PCR。说全了就是差异显示逆转录pcr,即DDRT-PCR。 技术路线是:提取总RNA--逆转录PCR--跑PAGE胶。通过比较刺激组和对照组(未刺激组)的DNA电泳图,观察哪些基因条带发生了变化,变多了,变少了,变没了,还是其他的变化等等。 当然,这种生物应力除了我做的声波外,还有其他的类型,包括光照、低温、高温、风等等,也包括你做的这种施加某种物质。 你可以在硕博论文数据库中,找找这方面的毕业论文。据我所知,重庆大学做生物应力做的比较多。 |

9楼2009-08-25 13:54:24
10楼2009-08-25 17:37:22












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