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TA克隆一直失败,我将我的操作现在写下来,让大家分析分析问题
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首先是PCR,之后对PCR产物切胶回收,浓度比较低,但也是有明显条带的,看亮度是100ng/ul左右,之后加A反应,我在操作过程中在冰盒上完全溶解后放在4度的条件下,之后取样进行的实验,连接反应同样如此,条件都是没问题的,都是固定的步骤,转化的时候我在冰盒上溶解感受态到碎冰妆做的,之后严格按步骤进行,该混合的时候也混合了,涂布时,混匀,吸取200ul涂布,每个板上取了5 个白色单菌落,可是都是空载,到底什么问题,我的基因GC含量比较高,TA克隆是不是都该做出来,是我傻才做不出来?求指点,可以问更具体的 发自小木虫Android客户端 |
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注意事项 1. 在进行克隆时,Vector DNA和Insert DNA的摩尔比一般为:1: 2~10。在本制品中,pMD18-T Vector 1 μl (50 ng) 的摩尔数约为0.03 pmol,Control Insert DNA 1μl (50 ng) 的摩尔数约为0.15 pmol。 2. 克隆时使用的Insert DNA片段 (PCR 产物) 尽量进行切胶回收纯化,PCR产物中的短片段 DNA(甚至是电泳也无法确认的非特异性小片段)、残存引物等杂质都会影响TA克隆的效率。 3. 按照本实验操作进行连接后,直接进行转化时的连接液不要超过20 μl。 4. 连接反应请在16℃下进行,温度升高 (>26℃) 较难形成环状DNA。 5. 连接效率偏低时,可适当延长连接时间至数小时。 6. 当进行转化的DNA用量较大或准备进行电转化时,需对连接液进行乙醇沉淀精制DNA后再进行转化。 |
2楼2019-09-26 10:04:54
3楼2019-09-26 11:32:55
安静de执着14
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转化完培养后,离心去掉大部分上清,把所有的菌液进行涂布;把平板上长出的单菌落都挑出来进行PCR验证,如果你操作没错的话,就算空载体多,肯定会有重组载体的。如果空载体真的特别多,那么你在酶切载体的时候,就需要适量增加酶量或者延长酶切时间。 发自小木虫Android客户端 |
4楼2019-09-26 11:49:06
woshishui916
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加A之后得纯化的,要不直接连,空载很多的 发自小木虫Android客户端 |
5楼2019-09-26 14:43:38
A913162220
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