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TA克隆一直失败，我将我的操作现在写下来，让大家分析分析问题
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首先是PCR，之后对PCR产物切胶回收，浓度比较低，但也是有明显条带的，看亮度是100ng/ul左右，之后加A反应，我在操作过程中在冰盒上完全溶解后放在4度的条件下，之后取样进行的实验，连接反应同样如此，条件都是没问题的，都是固定的步骤，转化的时候我在冰盒上溶解感受态到碎冰妆做的，之后严格按步骤进行，该混合的时候也混合了，涂布时，混匀，吸取200ul涂布，每个板上取了5 个白色单菌落，可是都是空载，到底什么问题，我的基因GC含量比较高，TA克隆是不是都该做出来，是我傻才做不出来？求指点，可以问更具体的 发自小木虫Android客户端 |
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注意事项 1. 在进行克隆时，Vector DNA和Insert DNA的摩尔比一般为：1: 2～10。在本制品中，pMD18-T Vector 1 μl (50 ng) 的摩尔数约为0.03 pmol，Control Insert DNA 1μl (50 ng) 的摩尔数约为0.15 pmol。 2. 克隆时使用的Insert DNA片段 (PCR 产物) 尽量进行切胶回收纯化，PCR产物中的短片段 DNA(甚至是电泳也无法确认的非特异性小片段)、残存引物等杂质都会影响TA克隆的效率。 3. 按照本实验操作进行连接后，直接进行转化时的连接液不要超过20 μl。 4. 连接反应请在16℃下进行，温度升高 (>26℃) 较难形成环状DNA。 5. 连接效率偏低时，可适当延长连接时间至数小时。 6. 当进行转化的DNA用量较大或准备进行电转化时，需对连接液进行乙醇沉淀精制DNA后再进行转化。 |
2楼2019-09-26 10:04:54
3楼2019-09-26 11:32:55
安静de执着14
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转化完培养后，离心去掉大部分上清，把所有的菌液进行涂布；把平板上长出的单菌落都挑出来进行PCR验证，如果你操作没错的话，就算空载体多，肯定会有重组载体的。如果空载体真的特别多，那么你在酶切载体的时候，就需要适量增加酶量或者延长酶切时间。 发自小木虫Android客户端 |
4楼2019-09-26 11:49:06
woshishui916
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加A之后得纯化的，要不直接连，空载很多的 发自小木虫Android客户端 |
5楼2019-09-26 14:43:38
A913162220
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