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沨1101

金虫 (小有名气)

[求助] 刚刚接触RNA干扰,但是不知道这个RNA序列怎么来,用什么软件来做,怎么选择等等问题。 已有3人参与

刚刚接触RNA干扰,看了一点文献,但是文献中并没有提到这个RNA怎么来的?难道这个RNA要自己设计吗?
请问一下用什么软件设计,又有什么要求之类的?
急呀,求大神帮忙!
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董博士

金虫 (正式写手)

引用回帖:
6楼: Originally posted by 董博士 at 2015-10-18 18:05:38
您好,siRNA实验引物设计是非常重要的,虽然可以让合成公司给设计,但是很多时候自己设计一下还是很有很有必要的,我今年3月5号 ,在小木虫上发表过一篇名为“分子实验中必须掌握的强大技能”详细截图+描述的讲述了 ...

不过这个是关于RT-PCR引物设计的,不过您也可以看一下,哈哈
医学&统计学
7楼2015-10-18 18:08:03
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反应链

新虫 (正式写手)

1998年,Fire等人发现正义RNA或反义RAN技术对基因表达的阻断,都是由于体外转录所得RNA中污染了微量双链RNA而引起。当他们将体外转录所得到的单链RNA纯化后注射线虫时发现,基因抑制效应变得十分微弱,而经过纯化的双链RNA却正好相反,能够高效特异阻断相应基因的表达。他们称这种现象为RNA干涉(RNA interference, RNAi)。

RNAi的作用机理为:
刚刚接触RNA干扰,但是不知道这个RNA序列怎么来,用什么软件来做,怎么选择等等问题。

外源的或体内产生的长双链RNA(long double stranded RNA,dsRNA)首先被Dicer酶降解为长21-23bp长度的小分子双链RNA(称为小干扰核酸,small interfering RNA,siRNA),这是一个依赖ATP的耗能过程。siRNA作为RNAi的中介分子,是一种具有3'两个核苷酸TT突出末端的21~23bp大小的双链核糖核酸,通过序列互补配对法则特异性降解目的基因。

然后,siRNA结合到核糖核酸酶复合物上形成RNA诱导的基因沉默复合体(RISC,RNA-induced silencing complex)。该复合体依赖ATP释能而解聚siRNA双链成单链以激活RISC。活化的RISC通过由siRNA决定的碱基互补配对原理定位到具有同源序列的基因转录体,并在距离siRNA 3’端12个碱基的位置切割mRNA, 最终导致基因沉默效应。

同时,RNAi过程中又有新的dsRNA分子合成,当siRNA反义链识别并结合靶mRNA后,siRNA反义链可作为引物,以靶mRNA为模板,在依赖于RNA的RNA聚合酶(RNA-dependent RNA polymerase,RdRP)催化下合成新的dsRNA,然后由Dicer切割产生新的siRNA,新siRNA再去识别新一组mRNA,又产生新的siRNA,经过若干次合成切割循环,沉默信号就会不断放大。正是这种称为靶序列指导的扩增(target-directed amplification)机制赋予了RNAi的高效性和持久性。

由于RNAi能高校特异地阻断基因的表达,有研究已构建能形成发夹结构RNA(hairpin RNA,hpRNA)的载体,用此载体装载目的基因的正向片段和反向片段,通过农杆菌转化植物,使其转录和加工出siRNA,引发相应的mRNA降解,为研究基因功能提供有效工具。
刚刚接触RNA干扰,但是不知道这个RNA序列怎么来,用什么软件来做,怎么选择等等问题。-1

因此,dsRNA是RNAi载体上转录的pre-RNA,由于正向片段与反向片段互补所形成的发夹结构RNA。由于RNAi载体是环状双链DNA,一般目的基因的正向片段和反向片段的序列相同,只是插入载体的方向相反。

由于dsRNA被剪切产生的micRNA是依据碱基互补配对原则靶定mRNA,一般在目的基因的CDS上设计引物扩增98bp-853bp正向片段和反向片段,既可以是ORF,也可以是UTR。用cDNA做PCR模板,记得片段两端加上酶切位点。
刚刚接触RNA干扰,但是不知道这个RNA序列怎么来,用什么软件来做,怎么选择等等问题。-2

参考资料:

1. 植物RNA干涉载体的构建及其在水稻基因表达沉默中的应用
2. 苹果多酚氧化酶双链RNA干扰_dsRNAi_研究
3. Construct design for efficient, effective and high-throughput gene silencing in plants
4. RNAi的作用机理与应用
2楼2015-10-13 19:30:19
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沨1101

金虫 (小有名气)

引用回帖:
2楼: Originally posted by 反应链 at 2015-10-13 19:30:19
1998年,Fire等人发现正义RNA或反义RAN技术对基因表达的阻断,都是由于体外转录所得RNA中污染了微量双链RNA而引起。当他们将体外转录所得到的单链RNA纯化后注射线虫时发现,基因抑制效应变得十分微弱,而经过纯化的 ...

那这个序列怎么设计,用什么软件设计?设计的时候有什么要求

发自小木虫IOS客户端
3楼2015-10-14 18:37:54
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反应链

新虫 (正式写手)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 沨1101 at 2015-10-14 18:37:54
那这个序列怎么设计,用什么软件设计?设计的时候有什么要求
...

1. 你们实验室有RNAi载体骨架,也就是可以直接插入目的基因正向片段和反向片段的重组质粒吗?我们需要依据RNAi载体骨架的酶切位点设计引物。比如,2楼的pHANNIBAL载体骨架,其正向片段插入位点为XhoI和KpnI,反向片段插入位点为ClaI和XbaI,这些位点序列需要加在相应引物的5‘端。

2. 你们RNAi实验针对的目的基因是什么?这个目的基因的cDNA需要是已知的,只有部分cDNA序列也可以。我们就根据cDNA序列设计引物,扩增带有相应酶切位点的正向片段和反向片段。比如,2楼文献《苹果多酚氧化酶双链RNA干扰_dsRNAi_研究》中的目的基因——苹果多酚氧化酶(apple polyphenol oxidase, APPO)基因。其cDNA序列可以从NCBI Genbank中搜索“apple polyphenol oxidase”查找http://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/D87670.1

3. 首先,根据cDNA设计普通PCR引物,可以使用在线Primer3 http://primer3.ut.ee/。PCR产物可以98bp-853bp,但为了便于酶切和连接操作,我们以一般选择500bp以上的。然后在引物的5'端加上相应的酶切位点和保护碱基即可。比如,2楼文献《苹果多酚氧化酶双链RNA干扰_dsRNAi_研究》中扩增710bp的引物。当然,这710bp片段不是唯一的,可以是该cDNA上容易扩增的任意片段。

设计要求不高,只要能扩增出来即可。但即可酶切位点要相对应,确保插入载体的正向片段和反向片段的方向相反。
4楼2015-10-14 20:10:44
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