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白色实验服

新虫 (初入文坛)

[求助] 测定土壤酶活力过程中的问题已有3人参与

小弟最近在测定土壤酶活力,常见的几种酶。像蔗糖酶(比色法)、脲酶(苯酚钠-次氯酸钠比色法)、蛋白酶(茚三酮比色法)、纤维素酶(硝基水杨酸比色法)等……
但是,在测定蛋白酶的时候出现一系列问题如下:
1:1、蛋白酶测定的时候,实验组和对照组(无土+无基质)全部出现茶色,并没有出现应该出现的蓝紫色,做了四次,全部都是茶色,不知道哪里出现问题了;
2、用酪素做基质,波长为500nm,用明胶做基质,波长为560nm,请问到底波长用多少合适?
3、培养结束后,过滤之前还是之后加入沉淀蛋白质的试剂,加入后需不需要离心?离心转速多少?离心在过滤之前还是过滤之后好?
4、没有离心,培养后直接过滤,过滤速度很慢(超级慢的那一种),这个现象合理不合理,如果不合理,该怎么做?
5、用酪素做基质,标准曲线用甘氨酸绘制?还是酪氨酸绘制?明胶做基质曲线用什么绘制呢?(查阅了很多文献,方法有的各不相同,希望大神解答……)
我用茚三酮比色法(酪素基质),测定波长为500nm;加勒斯江法(明胶基质),测定波长为560nm;实验还是不出结果,希望虫友帮助,小弟不胜感激……
在测定纤维素酶活力的时候,出现过滤很慢(无法想象的慢,甚至我怀疑过滤都停止了),不知道离心或者用布氏漏斗可以不可以(今天打算试一下的)……或者虫友有更好的解决办法。
第一次发帖,不便之处请见谅。刚签到三天,金币不多……希望大家能帮小弟解决这些问题,在线等。
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新虫 (初入文坛)

有人遇到过以上问题么,求告知……急。
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9楼2015-08-29 20:22:40
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新虫 (初入文坛)

引用回帖:
12楼: Originally posted by tingwaiwai at 2015-09-05 11:17:20
我想问下楼主,脲酶测定公式中V是50ml,那n大约是多少呢?谢谢楼主

n为分取倍数,浸出液体积/吸取滤液体积; 浸出液体积是指测定脲酶时加入的培养液体积,比如10ml尿素溶液和20ml柠檬酸盐缓冲液,即30ml,吸取滤液的体积就是指培养24h后过滤你吸取的滤液体积,比如吸1ml滤液,这样n=30
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16楼2015-10-11 22:38:53
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白色实验服

新虫 (初入文坛)

没人帮个忙么
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2楼2015-08-25 12:51:38
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我是一粒沙

铜虫 (初入文坛)

不懂楼上的问题,爱莫能助了。想请教一下你的脲酶的测定方法?
3楼2015-08-25 14:04:53
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autumuer

金虫 (小有名气)

【答案】应助回帖

感谢参与,应助指数 +1
今年还没做这些实验,所以不好瞎说。

那个蛋白酶颜色变化的问题可能是PH值没调好。我前几天测有机质的时候也遇到过相似的问题,调了一下PH值就好了。
——仅供参考。
4楼2015-08-25 16:07:45
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新虫 (初入文坛)

引用回帖:
3楼: Originally posted by 我是一粒沙 at 2015-08-25 14:04:53
不懂楼上的问题,爱莫能助了。想请教一下你的脲酶的测定方法?

土壤脲酶的测定方法(苯酚钠—次氯酸钠比色法)
1、试剂
1)甲苯;
2)10%尿素:称取10g尿素,用水溶至100ml;
3)柠檬酸盐缓冲液(PH6.7):184g柠檬酸和147.5g氢氧化钾(KOH)溶于蒸馏水。将两溶液合并(会暴沸,混合时要注意),用1mol/LNaOH将PH调至6.7,用水稀释定容至1000ml;
4)苯酚钠溶液(1.35mol/L):62.5g苯酚溶于少量乙醇,加2ml甲醇和18.5ml丙酮,用乙醇稀释至100ml(A液),存于冰箱中;27gNaOH溶于100ml水(B液)。将A、B溶液保存在冰箱中。使用前将A液、B液各20ml混合,用蒸馏水稀释至100ml;
5)次氯酸钠溶液:用水稀释试剂,至活性氯的浓度为0.9%,溶液稳定;
6)氮的标准溶液: 精确称取0.4717g硫酸铵溶于水并稀释至1000ml,得到1ml含有0.1mg氮的标准液;再将此液稀释10倍(吸取10ml标准液定容至100ml)制成氮的工作液(0.01mg/ml)。
2、操作步骤
称取5g土样于50ml三角瓶中,加1ml甲苯,振荡均匀,15min后加10ml10%尿素溶液和20ml PH 6.7柠檬酸盐缓冲溶液,摇匀后在37℃恒温箱培养24小时。培养结束后过滤,过滤后取1ml滤液加入50ml容量瓶中,再加4ml苯酚钠溶液和3ml次氯酸钠溶液,随加随摇匀。20min后显色,定容。1h内在分光光度计与578nm波长处比色。(靛酚的蓝色在1h内保持稳定)。
标准曲线制作:在测定样品吸光值之前,分别取0、1、3、5、7、9、11、13ml氮工作液,移于50ml容量瓶中,然后补加蒸馏水至20ml。再加入4ml苯酚钠溶液和3ml次氯酸钠溶液,随加随摇匀。20min后显色,定容。1h内在分光光度计上于578nm波长处比色。然后以氮工作液浓度为横坐标,吸光值为纵坐标,绘制标准曲线。
3、结果计算:
以24小时后1g土壤中NH3-N的毫克数表示土壤脲酶活性(Ure)。
Ure=(a样品-a无土-a无基质)×V×n/m式中:a样品为样品吸光值由标准曲线求得的NH3-N毫克数;a无土为无土对照吸光值由标准曲线求得的NH3-N毫克数;
a无基质为无基质对照吸光值由标准曲线求得的NH3-N毫克数;
V为显色液体积;n为分取倍数,浸出液体积/吸取滤液体积;m表示烘干土重
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5楼2015-08-25 16:07:46
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新虫 (初入文坛)

引用回帖:
4楼: Originally posted by autumuer at 2015-08-25 16:07:45
今年还没做这些实验,所以不好瞎说。

那个蛋白酶颜色变化的问题可能是PH值没调好。我前几天测有机质的时候也遇到过相似的问题,调了一下PH值就好了。
——仅供参考。

pH应该在哪一步调整,调整至多少?文献里边除了酪素用pH7.4的磷酸盐缓冲液配置的,其他的没有具体提到pH值这个问题啊……
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6楼2015-08-25 16:13:48
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云舒花开

新虫 (初入文坛)

我现在正在做测定蛋白酶活性实验,也遇到了同样的问题,显色是茶色,这两天一直在找问题查资料,不过还没找到原因,求解决办法~
7楼2015-08-25 16:41:01
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新虫 (初入文坛)

引用回帖:
7楼: Originally posted by 云舒花开 at 2015-08-25 16:41:01
我现在正在做测定蛋白酶活性实验,也遇到了同样的问题,显色是茶色,这两天一直在找问题查资料,不过还没找到原因,求解决办法~

一起讨论、解决问题吧……
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8楼2015-08-25 17:08:36
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arbesineja

至尊木虫 (著名写手)

蛋白酶对照组貌似就是近于茶色,我怀疑是蛋白酶活性比较低,楼主可以适当增加土壤量或者延长培养时间试试。然后根据土壤量和时间调整计算公式。纤维素酶因为基质问题就是很慢只能等着,木有什么好办法

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10楼2015-08-30 20:14:29
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