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wushenchao

新虫 (初入文坛)

[交流] 关于使用TAQMAN绝对定量的问题,block序列的使用 已有1人参与

我使用taqman对质粒样本(某一种特定的突变,进行检测的时候发现,有假阳性的存在)。具体情况如下

wildtype        GGTGGC        wildtype        GGTGGC
G12S                AGTGGC        G12A        GCTGGC
G12R        CGTGGC        G12V        GTTGGC
G12C        TGTGGC        G12D        GATGGC
由于
1. 本身wildtype与上述突变仅有一个碱基的差异
2. 上述G12S,G12R,G12C三个突变型之间也仅仅存在一个碱基的差异,G12A,G12V,G12D也仅仅存在一个碱基的差异。导致存在探针错配的可能性(即G12S的质粒样本,单克隆获取,放入上述所有探针,每个反应孔1种探针)。事实上我也做了实验,确实存在上述情况(G12S的质粒样本共使用8个孔,每孔放入一种探针,结果发现包含有G12C和G12R探针的反应孔的荧光值很高,且要显著高于其他类型的探针,见附件)。

我咨询了life的技术,说目前TAQMAN MGB探针也无法达到精确区别一个碱基的程度,也就是特异性也不足够好,但是如果实验需要绝对定量,这部分是避不开的。
我看了其他文献中提到的情况:To improve probe discrimination, we included nonfluorescent blockers consisting of 3􏰃-phosphate oligonucleotides in each reaction (see Supplemental Methods in the online Data Supplement). In short, the 4-plex assay contains blockers against mutated  sequences targeted in the 5-plex panel and the 5-plex assay contains blockers against mutated sequences targeted in the 4-plex panel.(实际情况就是,分两管进行多重PCR反应,在其中加了探针和引物以外还加了未标记荧光但是3‘磷酸化的序列),

不知道是否有看到过这种用法?能有具体提供的文献么?life的技术也说看到过,但是具体如何使用不是很清楚。多谢各位大虾了
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新虫 (小有名气)


小木虫: 金币+0.5, 给个红包,谢谢回帖
使用Taqman探针进行基因突变的荧光定量检测,报告基团FAM,淬灭基团BHQ。
以10的7次方IU/ml质粒为模板,按1%~100%的比例稀释,但是曲线一直不成线性中间10%~20%这个比例的CT值一直比32%的小。
前后用了两个体系,一个自己配的,一个用的Taqman master mix。Taqman master mix曲线很好看,有按比例来,但是产物一直不多。自己配的就是上面说问题,由于实验需要,我只能用自己配的体系
求前辈指导!!
2楼2015-10-23 10:57:24
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