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zsygxh金虫 (小有名气)
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Bradford测蛋白浓度,稀释样品之间浓度误差问题已有1人参与
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| 我的样品经常会稀释多次,比如稀释10倍(10+90),再稀释至20倍(50+50)、40倍,(用的是上样buffer,或6M盐酸胍),然后一起测浓度,尽管标曲r^2基本都能达到0.990以上,但是浓度在0.1-0.5范围内的样品浓度之间的倍数对应不起来,比如稀释20倍是0.366,而40倍却是0.233,误差较大,不知如何取舍。这种情况几乎在每次都会发生,且往往是稀释倍数越大,浓度越往上偏。怀疑过稀释不均匀,于是最近混匀时除了轻轻吹打,我还会离心快甩并再次摇晃混匀,所以基本排除不均匀的可能性。也想过是蛋白稀释时沉了,但后来用6M盐酸胍稀释(包涵体蛋白)也还是这样。考虑过同把移液枪不同刻度间可能有误差,所以采用上面50u+50u的比例稀释,可问题还在。现在,我实在想不出问题出在哪,而且每次测浓度我都特伤自尊,望有经验的虫虫交流下。 |
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不管何种方法测定蛋白浓度的准确性都依赖于待测蛋白的浓度,只有在一定范围内才处在线性范围内,浓度太低或太高时,测定值都会有偏差。 我相信,你的情况是过度稀释造成的,因为浓度很低,读数的任何轻微波动都会造成较大偏差。例如,如果浓度较高,读数可以从0.31波动至0.33,偏差对最总浓度影响不大,如从6.2变为6.6mg/ml(假定系数为x20)。但是,如果浓度很低,读数从0.07波动至0.09,这一波动对蛋白浓度的测到值却很大,分别为0.14和0.18。虽然波动差值都是0.02,前者引起的误差约6%,而后者在高达30%左右! 我的建议是,在较高蛋白浓度条件下测定蛋白,以此为准进行稀释就可以了,不需要对稀释后的蛋白再次测定。 |
2楼2014-08-24 09:53:34
zsygxh
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4楼2015-03-20 20:47:04
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5楼2016-02-16 16:10:06













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之所以测多组是因为蛋白浓度高,根据电泳结果不太确定要稀释几倍,所以往往稀释2组或3组,以确保有1-2组的浓度在0.1-0.5间。而最终,我通常也是取稀释倍数小的那个值的,毕竟稀释次数越多,越容易引起误差。其实我比较担心的是即使取前者的值也会偏高。因为普遍的现象是稀释n倍的浓度值小于稀释2n倍乘以2的值,所以我怀疑稀释n倍的浓度值乘以n也会高于蛋白原本浓度值。这是我最纠结的地方。