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qfish311

铁虫 (初入文坛)

[交流] 寻找感受态制备的好方法

最近我们实验室的感受态细胞一直都做的不好,最可怕的就是现做现用还可以
,但是一放到-70度冰箱再拿出来使用就不行了,连原质粒转化都不长斑。不知道到底是什么原因,我们用了氯化钙法。和网上找的一种TSB法,都是一样,而且用TSB法的DH5a菌落长的特别的小。
  哪位大虾能有好的,实验室已经用了很久的感受态制备protocol能教我一下吗?谢谢啊!
[search]感受态[/search]
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yufuxian

木虫 (著名写手)

换个菌株试试吧!!
2楼2008-01-09 00:01:16
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lihuanzheng

铜虫 (正式写手)

★ ★
reasonspare(金币+2,VIP+0):感谢帮助
一般来说做质粒转化的菌落是不是很大的,因为质粒本来对大肠杆菌也有一点毒性,所以用质粒的时候,最好不要超过2ul,还有在做感受态细胞的时候,悬浮时,力度不要太大,轻轻悬浮,一般做感受态细胞,按照分子克隆上的说明就OK的.
3楼2008-01-09 01:16:53
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ffeyner

新虫 (初入文坛)

自己用过,感觉挺好!

★ ★
asr(金币+2,VIP+0):thanks.辛苦了!
Prepare competent cell(1)
1.        Pick a single colony of E.coli cells into 4~5 l LB at 37℃ shaking 250 rpm overnight(15~16 h).(or 1:1000, E.coli : LB) for example: 5ul E.coli for 5 ml LB.
2.        100 ml +2ml overnight E.coli culture at 37℃ shaking 2 h.(about  OD=0.4)
3.        Aliquot separate culure into two 50 ml prechilled sterile polypropylene tubes and leave the tube on ice 5~10 min. centrifuge cells 7 min 3000 rpm, 4℃.
4.        Resuspend(gently) each pellet in 10 ml ice-cold 0.1M Cacl2 solution. Centrifuge 5 min at 3400 rpm(1100 g), 4℃.
5.        Resuspend each pellet in 10 ml ice-cold 0.1M Cacl2 solution. Keep resuspended cells on ice for 30 min. centrifuge 5 min at 1100 g, 4℃.
6.        Resuspend each pellet completely in 4 ml of ice-cold Cacl2 solution, Aliquot 200 ul into prechilled, sterile polypropylene tubes. Freeze immediately at 4℃(last two weeks for using). Or add glycerol at 15% final concentration, freeze immediately at -70℃(last several month for using). For example: 3 ml Cacl2-E.coli with 1 ml 50% glycerol.
4楼2008-01-09 21:04:23
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puma2003

铁杆木虫 (著名写手)

★ ★ ★ ★
asr(金币+2,VIP+0):thanks.
asr(金币+2,VIP+0):thanks.
影响因素很多,比如氯化钙什么的,你0.22vm微孔滤膜过滤再灭菌,一些分析纯的看着干净,其实有很多杂质的;-70度保存要加甘油的;制作过程加的氯化钙要预冷的,就是尽量提供最好的条件
5楼2008-01-10 17:09:24
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longxy

金虫 (小有名气)

★ ★
asr(金币+2,VIP+0):thanks.
氯化钙可以直接灭菌!
做感受态要注意3点:
1、一定不能过了0.5,宁少不要多于0.5!
2、动作一定要快
3、时刻保持在冰上,保持低温!
6楼2008-01-10 18:37:50
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mascotte

金虫 (正式写手)

★ ★
asr(金币+2,VIP+0):thanks.辛苦了!
我做过很多次感受态细胞了,可以说有一些心得。
基本上过程很简单:
1、从-80冰箱取出菌种,用接种环三区划线涂板,37度培养。
2、从培养了12-16个小时的平板上挑取单菌落,要分散比较好的单克隆,加0.5-1ml LB 37度摇菌6-8小时(也可12-16小时过夜摇)。
3、将小量的菌液转入大500ml三角烧瓶扩增培养。为保证通气良好,500ml三角烧瓶最多摇150ml菌液(100ml足以)。
4、扩增培养时注意将温度设为30度,稍低的温度有利于控制生长状态,不会摇过。
5、培养2小时之后测其OD值,接近0.3以后每20min测一次,在OD值达到0.3以后即可停止培养(可以用水作参比,LB培养基与水的OD值相差无几)。
6、在扩增培养同时制备0.1M CaCl2溶液。(1M CaCl2的母液用0.22um滤膜过滤后作为储存液,用时用灭菌水稀释十倍使用)
7、培养好的菌液立即置于冰上,旋转三角瓶,使其温度迅速冷却到0度。保持旋转状态10min。
8、4000rpm 4度 离心10min,弃去上清,加入0.1M CaCl2溶液。每50ml菌液加入20mlCaCl2溶液,冰上震荡重悬。
9、4000rpm 4度 离心10min,弃去上清,加入0.1M CaCl2溶液。每50ml菌液加入2 mlCaCl2溶液,冰上震荡重悬。
10、加入1/10体积的灭菌甘油。混匀后分装。

要注意的问题:
1、菌种要好,无污染。
2、所用的烧瓶、离心管应在使用前数天用去离子水充分浸泡,去除残留的各种离子。
3、扩增培养摇菌不能摇过。

好的感受态细胞对于分子实验非常重要,请牢记细节决定成败。祝你好运。
7楼2008-01-10 19:40:16
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mascotte

金虫 (正式写手)

补充一句,按照这个protocal做的感受态转化效率可以达到每20ng连接产物1000个克隆。如果是阳性转化的话应该能达到每ug 1,000,000个克隆。
8楼2008-01-10 19:53:42
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larainestar

推荐一下SSCS的试剂盒。只需要在培养菌到相应的OD后离心去除上清,用该液体重悬菌泥,分装,液氮速冻即可。
并非广告啊。
我们在用,生工买的,效率颇高。
9楼2008-01-10 20:16:45
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skkyy88888

铜虫 (著名写手)

-70保存最好加点抗冻剂,比如DMSO,在增强转化效率方面可以加少许K-MES。制好的感受态最好液氮放置10钟以上在转移到-70,效果很好,可与市面上出售的感受态像媲美。
10楼2008-01-10 20:35:36
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