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邓满凤

新虫 (初入文坛)

[求助] 急需

有哪位大侠做过磁性纳米颗粒固定化漆酶?为什么我将0.1- 0.25%的戊二醛直接加入到1ml0.5mol/ml的漆酶溶液(包含了5mg的氨基化的二氧化硅)中,在冰箱中固定化12个小时后测酶活回收率怎么只有3%?可以帮忙分析下吗
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邓满凤

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
2楼: Originally posted by duruo at 2013-10-29 14:35:21
0.5mol/mL ? 笔误吧?
不知道你的操作过程如何

不过将戊二醛直接加入酶的溶液中,应该会造成酶自身的交联,使其失活

先用戊二醛活化二氧化硅,然后加入酶,可能会好些

请问0.5mg/ml的酶液不行吗?我试过先用戊二醛活化二氧化硅,然后加入酶,但活性收率太低了
3楼2013-10-29 15:15:56
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duruo

荣誉版主 (文坛精英)

孩儿她爹

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【答案】应助回帖

★ ★ ★
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markar: 金币+1, 感谢回帖交流! 2013-11-01 15:40:31
邓满凤(红舟流星代发): 金币+2, 代扣代发金币 2014-03-25 10:52:12
0.5mol/mL ? 笔误吧?
不知道你的操作过程如何

不过将戊二醛直接加入酶的溶液中,应该会造成酶自身的交联,使其失活

先用戊二醛活化二氧化硅,然后加入酶,可能会好些
能攻心则反侧自消,从古知兵非好战;不审势即宽严皆误,后来治蜀要深思
2楼2013-10-29 14:35:21
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duruo

荣誉版主 (文坛精英)

孩儿她爹

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【答案】应助回帖


邓满凤(红舟流星代发): 金币+1, 代扣代发金币 2014-03-25 10:52:19
引用回帖:
3楼: Originally posted by 邓满凤 at 2013-10-29 15:15:56
请问0.5mg/ml的酶液不行吗?我试过先用戊二醛活化二氧化硅,然后加入酶,但活性收率太低了...

呵呵,0.5mg可以,0.5mol就太大了

你是怎么计算活性收率的?最好把整个过程都写出来
能攻心则反侧自消,从古知兵非好战;不审势即宽严皆误,后来治蜀要深思
4楼2013-10-29 15:21:35
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邓满凤

新虫 (初入文坛)

引用回帖:
4楼: Originally posted by duruo at 2013-10-29 15:21:35
呵呵,0.5mg可以,0.5mol就太大了

你是怎么计算活性收率的?最好把整个过程都写出来...

取6mg氨基活化的磁性二氧化硅纳米颗粒分散到1ml浓度为0.5mg/ml漆酶溶液(用磷酸盐缓冲液配置)中,加入20ul,0.1%的戊二醛,然后将反应混合物置于4℃的恒温摇床上反应13h,其中摇床的转速为150rpm。反应结束时,用磁铁吸住磁性微球,倾去上清液。用磷酸盐缓冲液(0.1M,PH 7)洗涤磁性纳米颗粒,并且记录好每次洗涤的体积,直到上清液检测不到蛋白质为止。将所制备的固定化漆酶保存在磷酸盐缓冲液中。

活性收率=固定上的酶活力/相同量的游离酶的活力
固定化酶的活力是在线测5min ,得到吸光值与时间的关系,算出活力
以前用先交联喜干净后再加酶进行固定化,条件跟上面说的一样,为什么这两种方法测出来的活性收率这么低?真心希望得到你的指导,谢谢!
5楼2013-10-31 18:50:45
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